ЭФФЕКТИВНОСТЬ ЛЕЧЕНИЯ ХЛАМИДИОЗНОГО КОНЪЮНКТИВИТА У КОШЕК

Хламидиоз – бактериальное заболевание многих видов животных, включая диких, домашних животных и человека. Распространен повсеместно. Частота обращений в клиники с мелкими домашними животными с подозрением на хламидиоз составляет от 5 до 20%, в частности, кошек 8,4% [4], [7], [8]. Хламидиоз кошек обладает видовой специфичностью и не передается человеку. Источником заболевания кошек является внутриклеточная грамотрицательная бактерия Chlamydia felis. Инфекция может сопровождаться воспалением слизистых оболочек верхних дыхательных путей – ринитом, фарингитом, редко – воспалением лёгких. Доминирующим клиническим симптомом является поражение слизистой оболочки глаз в форме гнойных или серозных конъюнктивитов, реже кератитов [2], [5], [7], [9]. По данным некоторых авторов, частота конъюнктивитов хламидийной этиологии колеблется от 30 до 46% всех конъюнктивитов у кошек [11]. Воспаление конъюнктивы, как правило, начинается в одном глазу и затем, приблизительно через неделю, переходит на другой. На ранних этапах болезни наблюдается эпифора (сильное слезотечение). Со временем выделения становятся слизистыми или слизисто–гнойными.  Отмечается блефароспазм. Клинические проявления инфекции в основном продолжаются до 60 дней, после чего могут исчезнуть самостоятельно. Заболевание при несвоевременном и неадекватном лечении, как правило, переходит в хроническую форму с частыми рецидивами [1], [2], [3]. Согласно данным литературы, доказана высокая чувствительность хламидийной инфекции к препаратам хинолонового ряда (флоксал, окацин) и комбинированным антибиотикам (эубетал, колбиоцин) [11]. В настоящее время диагностика хламидиоза в лабораториях осуществляется высокочувствительными методами  РСК, РНГА, РТГА, РДП, ИФА, ПЦР и др. При этом отмечается, что наиболее эффективным методом с учетом скорости получения результатов анализа (5-6 час.) является ПЦР [5], [6].

Работа выполнена на кафедре незаразных болезней сельскохозяйственных животных института биотехнологии и ветеринарной медицины ФГБОУ ВО Государственного аграрного университета Северного Зауралья и в условиях ветеринарной клиники «Ветэкспресс» (г. Тюмень). Наблюдение проводили в течение одного года с мая 2021 г. по май 2022 г.

Объект исследования – кошки с признаками конъюнктивита.  Диагностику проводили  на основании общепринятых методов  исследования: cбор анамнеза и клинический осмотр. Для лучшей визуализации клинических изменений использовали увеличительное стекло. С целью дифференциальной диагностики проводили контрастное исследование роговицы с использованием флюоресцеиновых тест-полосок (для исключения повреждений роговицы); термометрию; общий анализ крови. Для подтверждения хламидиозной этиологии конъюнктивита в качестве специального метода исследования использовалась ПЦР-диагностика, как одним из самых чувствительных и эффективных методов исследования на хламидиоз у животных. Отбор лабораторных проб проводили при помощи одноразовых стерильных зондов методом соскоба эпителиальных клеток конъюнктивы верхнего и нижнего век обоих глаз после однократной инстилляции анестетика. При различной степени пораженности глаз материал брали сначала со здорового глаза, затем – с пораженного. Собранный материал помещали вращательными движениями в микропробирку с транспортной средой. Затем пробирку плотно закрывали, маркировали, использованный зонд утилизировали. Пробирка с биоматериалом и с составленными к ней сопроводительными документами, содержащими всю необходимую информацию о животном и владельцах, транспортировалась курьером в лабораторию Vet Union.

Для изучения эффективности этиотропного лечения были сформированы две группы по 4 животных в каждой с диагнозом острый хламидиозный конъюнктивит в возрасте от 1,5 мес. до 3 лет массой 0,9-5,3 кг. Необходимо уточнить, что все кошки не были вакцинированы, имели возможность уличного выгула и контакта с бродячими животными, условия кормления в каждом случае – индивидуальны. До начала лечения были проведены: взвешивание, клинический осмотр, измерение температуры, частоты дыхательных движений и частоты сердечных сокращений. Установлено, что все исследуемые показатели находились в пределах физиологической нормы.

Лечебные мероприятия проводили по двум схемам: в первой группе применяли терапию с использованием антибактериальных средств только местного действия, во второй – препараты местного и системного действия.

Первая схема лечения включала тетрациклин - антибактериальное офтальмологическое средство широкого спектра действия в форме 1%-ной глазной мази методом закладывания в нижний конъюнктивальный мешок пораженного глаза 6 раз в сутки через равные промежутки времени в течение 28 дней. Вторая схема  включала в себя антибактериальные препараты местного действия «Флоксал 0,3%» и системного действия  «Доксифин». Флоксал инсталлировали по 1 капле в нижний конъюнктивальный мешок пораженного глаза 6 раз в сутки через равные промежутки времени курс 28 дней. Доксифин - бактериостатический полусинтетический антибиотик группы тетрациклинов широкого спектра действия. Препарат применяли перорально в дозе 10 мг на 1 кг массы животного 1 раз в сутки или 5 мг на 1 кг массы животного 2 раза в день курс 28 дней.

В обе схемы лечения входил «Дикло-ф 0,1%» (действующее вещество – диклофенак натрия оказывает противовоспалительное, анальгезирующее и жаропонижающее действие) для устранения блефароспазма и дискомфорта.  Этот нестероидный противовоспалительный препарат для местного применения в офтальмологии в форме глазных капель  применяли методом инстилляции по 1 капле в нижний конъюнктивальный мешок 3 раза в сутки курс 7 дней.

Перед каждым применением глазных мазей и капель проводили обработку поверхности роговицы, конъюнктивального мешка и век от выделений стерильным изотоническим раствором натрия хлорида. Во избежание самотравматизации больным животным было назначено ношение воротника на весь период лечения.

Контроль эффективности назначенной терапии – через две недели с момента начала лечения заключался в клиническом осмотре  животных с повторным взятием образцов для ПЦР–исследования на хламидиоз.

За период наблюдения в ветеринарную клинику поступили 1260 кошек, из которых у 35 (2,8%) были выявлены признаки конъюнктивита, в том числе 13 – с подтвержденным диагнозом острый хламидиозный конъюнктивит, что составило 37,1% от общего числа животных с диагнозом конъюнктивит. Полученный результат согласуется с данными литературы [11].

Контрольный осмотр через 14 дней с начала лечения показал, что появились существенные улучшения. Истечений становилось меньше, купировалась болезненность век и конъюнктивы. Однако у большинства животных клиническая картина сохранялась (гиперемия конъюнктивы, слезотечение), но была менее выраженной. Полное исчезновение клинических признаков было отмечено только у одной кошки (25%). Кроме того, у всех пациентов первой группы при повторном проведении анализа на хламидиоз результат был положительный. По этой причине всем кошкам из первой группы к ранее назначенному лечению был добавлен антибактериальный препарат системного действия. У кошек второй группы, получавших комплексную этиотропную терапию антибактериальными препаратами местного и системного действия, симптомы исчезли в течение 10 дней с момента начала лечения. При контрольном осмотре через 2 недели характерных клинических признаков патологии не обнаружено. Повторный анализ на хламидиоз во всех случаях показал отрицательный результат.

В ходе анализа двух схем лечения хламидиозного конъюнктивита кошек было установлено, что вторая схема лечения, включающая применение антибактериальных препаратов местного и системного действия, показала абсолютный результат: полное купирование  клинических признаков наступило на 10-й день лечения у 4 кошек из 4 (100%-ная эффективность). По результатам повторного ПЦР – исследования на 14-й день лечения у 4 кошек из 4 был получен отрицательный результат на хламидиоз (100%). Таким образом, можно сделать заключение, что для повышения эффективности лечения хламидиозного конъюнктивита у кошек целесообразно применять сочетанную терапию  использованием антимикробных средств местного и системного действия.