Revista de Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research

Vol. 19 Núm. 2 (2017)
Artículo original

Optimización de sustratos para la producción de conidias de Trichoderma harzianum por fermentación sólida en la región de San Martín, Perú

pdf
  • Enrique Arévalo,
  • José Cayotopa,
  • Delmar Olivera,
  • Mar Gárate,
  • Erick Trigoso,
  • Betsabe Leon
Enrique Arévalo
Laboratorio de Fitopatología – Región San Martín Perú;
José Cayotopa
Laboratorio de Fitopatología – Región San Martín Perú
Delmar Olivera
Laboratorio de Fitopatología – Región San Martín Perú
Mar Gárate
Laboratorio de Fitopatología – Región San Martín Perú
Erick Trigoso
Laboratorio de Fitopatología – Región San Martín Perú
Betsabe Leon
Laboratorio de Fitopatología – Región San Martín Perú

Publicado 2017-06-26

Palabras clave

  • multiplicación,
  • antagonista,
  • arroz,
  • germinación,
  • pureza

Cómo citar

Arévalo, E. . ., Cayotopa, J. . ., Olivera, D. . ., Gárate, M. . ., Trigoso, E. . ., & Leon, B. . . (2017). Optimización de sustratos para la producción de conidias de Trichoderma harzianum por fermentación sólida en la región de San Martín, Perú. Revista De Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research, 19(2), 135-144. https://doi.org/10.18271/ria.2017.272

Resumen

Con la finalidad de optimizar sustratos alternativos al grano de arroz entero de buena calidad para la producción de conidias de Trichoderma harzianum, se realizó mezclas de residuos agrícolas (cascarilla de arroz entera, cascarilla de arroz molida, cáscara de maní) con arroz triturado de descarte conocido como Ñelen y fuentes nutritivas como agua, urea y carbonato de calcio (CaCo3 ) para seleccionar el mejor sustrato en el que se obtenga la mayor cantidad de conidias viables bajo un diseño completamente al azar, con 14 tratamientos y tres repeticiones. La producción se realizó en dos fases: producción de inóculo mediante fermentación líquida y producción masiva de conidias por fermentación sólida. Se evaluó el número de conidias por gramo de sustrato, porcentaje de germinación y pureza. La producción de conidias de T. harzianum fue superior a 1x1010 conidias. g-1 de sustrato en los residuos agrícolas que fueron mezclados con Ñelen, superando estadísticamente al sustrato convencional (arroz entero). La mayor concentración de conidias se dio en el tratamiento T7 (Cascarilla de arroz entera + Ñelen) seguido de T8 (Cascarilla de arroz molida + Ñelen) y T9 (Cáscara de maní + Ñelen) enriquecidos con urea. Asimismo, el porcentaje de germinación de conidias de T. harzianum mostró niveles superiores al 85%, siendo los tratamientos enriquecidos con agua con valores de germinación ≥ 90 %. Por consiguiente, todos los tratamientos presentaron 100% de pureza, lo cual indica que son aceptados por las normas de calidad y representan una mejor opción para la producción de este hongo.

pdf

Referencias

  1. Acosta Rojas, S., & Villa, J. A. (2017). Evaluación de Trichoderma spp como Control Biológico en una Plantación a Pequeña Escala de Cacao. Journal of Agriculture and Animal Sciences, 5(2).
  2. Alamri, S., Mostafa, Y. S., Hashem, M., & Alrumman, S. (2016). Enhancing the Biocontrol Efficiency of Trichoderma harzianum JF419706 through Cell Wall Degrading Enzyme Production. International Journal of Agriculture and Biology, 18(4), 765-772.
  3. Amaro Leal, L., Romero Arenas, O., Rivera, T., & Huerta, L. (2015). Producción de Trichoderma viride en diferentes sustratos agrícolas. Paper presented at the V Congreso Latinoamericano de Agroecología-SOCLA (7 al 9 de octubre de 2015, La Plata).
  4. Ávalos, G., & Geoconda, V. (2016). Determinación de la estabilidad y viabilidad de Trichoderma harzianum Rifai en cinco sustratos usados para la elaboración de un biofungicida en formulación líquida. (INGENIERA EN BIOTECNOLOGÍA AMBIENTAL), Escuela Superior Politécnica de Chimborazo, Riobamba-Ecuador.
  5. Bellino, C. M. B., & Marroquín, L. C. (2015). Producción de Trichoderma Harzianum en diferentes sustratos orgánicos. Portal de la Ciencia, 4, 68-74.
  6. Cooney, J., Lauren, D., Jensen, D., & Perry-Meyer, L. (1997). Effect of Solid Substrate, Liquid Supplement, and Harvest Time on 6-n-Pentyl-2 H-pyran-2-one (6PAP) Production by Trichoderma spp. Journal of agricultural and food chemistry, 45(2), 531-534.
  7. Crozier, J., Arroyo, C., Morales, H., Melnick, R. L., Strem, M. D., Vinyard, B. T., . . . Bailey, B. A. (2015). The influence of formulation on Trichoderma biological activity and frosty pod rot management in Theobroma cacao. Plant Pathology, 64(6), 1385-1395. doi: 10.1111/ppa.12383
  8. Chávez-García, M., Montaña-Lara, J. S., Martínez-Salgado, M. M., Mercado-Reyes, M., Rodríguez, M. X., & Quevedo-Hidalgo, B. (2008). Efecto del sustrato y la exposición a la luz en la producción de una cepa de Trichoderma sp. Universitas Scientiarum, 13(3), 245-251.
  9. Chet, I., Benhamou, N., & Haran, S. (1998). Mycoparasitism and lytic enzymes. Trichoderma and Gliocladium, 2, 153-172.
  10. Di Rienzo, J. A., Casanoves, F., Balzarini, M. G., Gonzalez, L., Tablada, M., & Robledo, C. W. (2008). InfoStat software estadistico, Manual del Usuario (Version 2008). Argentina.: Universidad Nacional de Córdoba.
  11. Estrada Carchi, J. I. (2017). Efectos y épocas de aplicación de cinco dosis de trichoderma spp en las enfermedades del cultivo de arroz Oryza sativa L. Facultad de Ciencias Agrarias Universidad de Guayaquil.
  12. Fonseca, L. (1998). Estudio preliminar sobre la dinámica poblacional del biocontrolador Trichoderma spp. en el suelo. (Trabajo de grado. ), Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá DC.
  13. Gato, C. Y. (2010). Métodos de conservación y formulación de trichoderma harzianum rifai. Fitosanidad, 14, 189-195.
  14. Gómez, R. H., Soberanis, R. W., Tenorio, C. M., & Torres, S. E. ( 2011). Manual de producción y uso de hongos antagonistas. In SENASA (Ed.), (pp. 40). LIMA. Peru.
  15. Guédez, C., Cañizález, L., Castillo, C., & Olivar, R. (2009). Efecto antagónico de Trichoderma harzianum sobre algunos hongos patógenos postcosecha de la fresa (Fragaria spp). Revista de la Sociedad Venezolana de Microbiología, 29, 34-38.
  16. Harman, G. (2011). Trichoderma—not just for biocontrol anymore. Phytoparasitica, 39(2), 103-108.
  17. Hjeljord, L., & Tronsmo, A. (1998). Trichoderma and Gliocladium in biological control: an overview. Trichoderma and Gliocladium, 2, 131-151.
  18. Hoyos-Carvajal, L., Orduz, S., & Bissett, J. (2009). Growth stimulation in bean (Phaseolus vulgaris L.) by Trichoderma. Biological Control, 51(3), 409-416.
  19. Infante, D., Martínez, B., González, N., & Reyes, Y. (2009). Mecanismos de accion de Trichoderma frente a hongos fitopatogenos. Revista de Protección Vegetal, 24, 14-21.
  20. Kamali, N., Sahebani, N., & Pourjam, E. (2016). Effect of Trichoderma harzianum BI on chitinase and glucanase activity in tomato roots infected with Meloidogyne javanica and Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Iranian Journal of Plant Pathology, 52(1).
  21. Ladino-Rey, O. E., Chaves-Betancourt, G. A., Rubio, J. D., & Chacin-Zambrano, C. A. (2017). Evaluación de Trichoderma sobre hongos contaminantes de semillas de palma híbrida interespecífica OxG (Elaeis oleifera x Elaeis guineensis). Respuestas, 22(1), 96-102.
  22. Michel-Aceves, A. C., Otero-Sánchez, M. A., Martínez-Rojero, R. D., Rodríguez-Morán, N. L., Ariza-Flores, R., & Barrios-Ayala, A. (2008). Producción masiva de Trichoderma harzianum Rifai en diferentes sustratos orgánicos. Revista Chapingo. Serie horticultura, 14, 185-191.
  23. Mukherjee, M., Mukherjee, P., Horwitz, B., Zachow, C., Berg, G., & Zeilinger, S. (2012). Trichoderma–Plant–Pathogen Interactions: Advances in Genetics of Biological Control. Indian Journal of Microbiology, 52(4), 522-529. doi: 10.1007/s12088-012-0308-5
  24. Pandey, A. (2003). Solid-state fermentation. Biochemical Engineering Journal, 13(2), 81-84.
  25. Pérez-Guerra, N., Torrado-Agrasar, A., López-Macias, C., & Pastrana, L. (2003). Main characteristics and applications of solid substrate fermentation. Electronic Journal of Environmental, Agricultural and Food Chemistry, 2(3).
  26. Pérez, L., Ramírez, C., Martínez, M., & Algecira, N. (2002). Efecto de las variables, condiciones de la fermentación y del sustrato en la producción de Trichoderma harzianum. Revista de Protección Vegetal.
  27. Pinciroli, M. (2011). Proteínas de arroz: propiedades estructurales y funcionales. Facultad de Ciencias Agrarias y Forestales.
  28. Quiceno Villada, D., Gutiérrez, M., & Yaír, M. (2012). Alternativas tecnológicas para el uso de la cascarilla de arroz como combustible. (Bachelor's thesis), Universidad Autónoma de Occidente.
  29. Ramos, E. Y. A., Navarro, R. I. Z., Zumaqué, L. E. O., & Violeth, J. L. B. (2008). Evaluación de sustratos y procesos de fermentación sólida para la producción de esporas de Trichoderma sp. Revista colombiana de biotecnología, 10(2), 23.
  30. Reyes Duque, Y., Infante Martínez, D., & Martínez Coca, B. (2016). Eficacia de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt & Nirenberg para el control de Rhizoctonia solani Kühn en condiciones de campo. Revista de Protección Vegetal, 31(2), 107-113.
  31. Rosas-Acevedo, J., Avalos, O., Rosas-Acevedo, A., Sánchez-Infante, A., & Sampedro-Rosas, L. (2008). Utilización de desechos orgánicos como sustrato para la producción de un fungicida natural en la región cafetalera del municipio de Tuxtepec, Oaxaca y Zihuatanejo, Gro.
  32. Samuels, G. J. (1996). Trichoderma: a review of biology and systematics of the genus. Mycological Research, 100(8), 923-935. doi: http://dx.doi.org/10.1016/S0953-7562(96)80043-8
  33. Valverde, A., Sarria, B., & Monteagudo, J. P. (2007). Análisis comparativo de las características fisicoquímicas de la cascarilla de arroz. Scientia et technica, 1(37).
  34. Vásconez, R. D. A., & Imbaquingo, C. K. E. (2016). AISLAMIENTO, CARACTERIZACIÓN Y EVALUACIÓN DE Trichoderma spp. COMO PROMOTOR DE CRECIMIENTO VEGETAL EN PASTURAS DE RAYGRASS (Lolium perenne) Y TRÉBOL BLANCO (Trifolium repens). La Granja, 25(1), 53-61.
  35. Velez, P. E., Posada, F. J., Marin, P., Gonzalez, M. T., Osorio, E., & Bustillo, A. E. (1997). Tecnicas para el control de calidad de formulaciones de hongos entomopatogenos. . In Cenicafe (Ed.), (Primera edicion ed.). Colombia: Ospina, H.F.
  36. Vera, J. L., & Leon, B. (2016). Efecto de métodos y dosis de aplicación de trichoderma veride en la aclimatación y crecimiento de vitroplantas de papa varidad imilla negra durante las épocas de Invierno Primavera. Revista de Investigaciones Altoandinas-Journal of High Andean Research, 18(1), 47-54.

Artículos similares

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.