Zusammenfassung
Die Stickstoffverbindungen werden hier nur insoweit behandelt, als sie in Lebensmitteln mehr oder weniger allgemein verbreitet vorkommen, nämlich die Proteine, deren bei der Hydrolyse entstehende Aminosäuren und die Amine, ferner Ammoniak, Salpetersäure und Salpetrige Säure.
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Literatur
Mit dem Problem der Gerinnung haben sich H. Luzus und M. Landauer (Zeitschr. angew. Chem. 1922, 35, 469) beschäftigt.
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Nach H. Labbé und R. Maguix (Compt. rend. Paris 1913, 156, 1415; Z. 1916, 32, 503) ist ein beträchtlicher Überschuß an Pikrinsäure erforderlich.
Tx. Budde (Apoth.-Ztg. 1927, 42, 754) empfiehlt die Verwendung des Natriumsalzes anstatt der freien Säure.
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Vgl. auch K. Polier: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1926, 59, 1927.
Nach G. L. Teller (Cereal Chem. 1932, 9, 261; C. 1932, II, 461) beträgt der Stickstofffaktor für Asparagin 4,71, Arginin 3,11, Allantoin 2,82, Betain 9,64, Cholin 8,64, Lecithin 57, 8.
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H. Schjerning: Zeitschr. analyt. Chem. 1900, 39, 545, 633.
Durch die Gegenwart von Peptonen dürften sich auch wohl die zu niedrigen Ergebnisse erklären, welche F. Westhausser (Zeitschr. physiol. Chem. 1911, 72, 363) und S. Kostytschew (Zeitschr. physiol. Chem. 1923, 130, 34) bei der Bestimmung des Reinproteins durch Kupferhydroxyd bei Pepsinverdauungsprodukten und Hefeautolysaten beobachtet haben.
Statt Mercks natronfreien Uranacetates (puriss. crystall.), welches häufig basisches Salz enthält, schlägt Schjerning vor, das Uranacetat pro analysi zu verwenden, das zwar nicht natronfrei ist, aber dafür kein basisches Salz enthält.
E. Voi: Zeitschr. Biol. 1926, 84, 153.
FR. Weber: Zeitschr. Biol. 1926, 84, 169.
C. Mannich u. G. Wipperling: Z. 1920, 40, 12.
Vgl. auch. W. Windisch, W. Dietrich u. A. Mehlitz: Wochenschr. Brauerei 1923, 40, 1; Z. 1924, 48, 315.
Zu beziehen von der Membranfilter G. m. b. H. in Göttingen, Fabrikweg 2.
Eine vergleichende Untersuchung der verschiedenen Fällungsmittel bei Bierwürze bringt H. Schjerning in Zeitschr. analyt. Chem. 1894, 33, 263; 1895, 34, 135; 1896, 35, 285; 1897, 36, 643; 1898, 37, 73; 1900, 39, 545.
H. Schjerning: Zeitschr. analyt. Chem. 1900, 39, 545.
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Schmidt-Mülheim: Zeitschr. analyt. Chem. 1880, 19, 127.
Vgl. den Abschnitt „Verdaulichkeit der Lebensmittel“, S. 1457.
A. Stutzer: Journ. Landwirtsch. 1880, 28, 201; 1881, 29, 475;
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A. Stutzer: Vgl. ferner die Veröffentlichungen in Journ. Landwirtstb. 1906, 54, 234.
O. Kellner: Arbeiten der Versuchsstation Möckern 1894, S. 188, oder auch Landw. Vers.-Stationen 1894, 44, 188.
B. Sjollema Z. 1899, 2, 413.
K. Wedemeyer: Landw. Vers.-Stationen 1899, 51, 383.
Die Vorschrift von Sjollema ist nicht wesentlich von der von Wedemeyer verschieden; sie sieht einen viermaligen Zusatz von 10%iger Salzsäure vor.
A. Bö1uee: Zeitschr. analyt. Chem. 1895, 34, 562.
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Vgl. L. Rosenthaler: Nachweis organischer Verbindungen, S. 608f. Stuttgart: Ferdinand Enke 1914.
H. Meyer: Nachweis und Bestimmung organischer Verbindungen. Berlin: Julius Springer 1933. — Daselbst sind auch noch weitere Reaktionen angegeben.
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Meist korrigierte Schmelzpunkte.
Nach L. Rosenthaler: Der Nachweis organischer Verbindungen. Stuttgart: Ferdinand Enke 1914; und H. Meyer: Nachweis und Bestimmung organischer Verbindungen. Berlin: Julius Springer 1933.
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Die Bezeichnung „Formol“ ist von Sörensen ihrer Kürze wegen für Formaldehyd vorgeschlagen.
Vgl. auch A. Clementi: Atti R. Acad. Lincei Roma 1915, 24, I, 352; Z. 1918, 35, 283.
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Der Apparat ist aus dem Acidimeter von H. Liters (Zeitschr. ges. Brauwesen 1914, 37, 334) hervorgegangen und von L. Adler (Zeitschr. ges. Brauwesen 1915, 38, 241) beschrieben und zur Formoltitrierung verwendet.
Das Titriercoloriskop wird von F. Hellige & Co. in Freiburg i. B. geliefert.
J. Tillmans u. H. Kiesgen: Z. 1927, 53, 126.
S. P. L. Sörensen: Blochern. Zeitschr. 1909, 21, 167.
Neutralrot extra (Kahlbaum) in 1 Liter neutralem 50%igem Alkohol gelöst. Die Lösung ist in einer braunen Flasche monatelang unverändert haltbar.
Phenolphthalein in 1 Liter neutralem 50%igem Alkohol.
P. Ascwmarin: Arch. Sciences biol., St. Petersburg (russ.) 1924, 23, 347; C. 1926, I, 3418.
D. D. Van Slyke: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1910, 43, 3170; 1911, 44, 1684.
R. Sachsse u. W. Kormann: Landw Vers.-Stationen 1874, 17, 321.
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J. König u. A. Splittgerber: Z. 1909, 18, 497.
D. D. Van Slyke: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1910, 43, 3170; 1911, 44, 1684.
Vgl. ferner Van Slyke: Journ. Biol. Chem. 1913, 16, 121 (Apparat für Mikrobestimmung); 1915, 22, 281; 23, 407; C. 1914, I, 684; 1915, II, 1217; 1916, I, 353.
Der Apparat wird von R. Götze-Leipzig und von E. Machlett and Son-New York, 143 East 43 St., geliefert.
F. C. Koch (Journ. Biol. Chem. 1929, 84, 601; C. 1930, I, 1831) hat einen abgeänderten Apparat empfohlen.
D. Klein Journ. Biol. Chem. 1911, 10, 287;
H. Meyer: Analyse und Konstitutionsermittlung organischer Verbindungen. 5. Aufl., S. 524. Berlin: Julius Springer 1931.
Nach L. Rosenthaler (Biochem. Zeitschr. 1929, 207, 298) sind bei Lysin 1/2 Stunde und bei anderen Stoffen mit einer NH2-Gruppe noch längere Zeiten bis zur Beendigung der Reaktion erforderlich.
J. Tillmans u. J. Kiesgen: Z. 1927, 53, 126.
E. Waldschmidt-Leitz: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1921, 54, 2988.
L. J. Harris: Proceed. Roy. Soc., London Serie B 1923, 95, 440, 500; C. 1924, I, 435, 1421.
Das Verfahren liefert nach R. Martens (Bull. Soc. Chim. biol. 1927, 9, 454; C. 1927, II, 720) sehr genaue Ergebnisse.
Zwecks Neutralisierung werden die 50 ccm Alkohol mit 0,5 ccm alkoholischer 0,4%iger Thymolpbthaleinlösung und bis zum Umschlag mit 0,1 N.-Natronlauge versetzt.
W. Grassmann u. W. Heyde: Zeitschr. physiol. Chem. 1929, 183, 32.
J. Tillmans u. J. Kiesgen: Z. 1927, 53, 126.
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Der Zusatz von Natriumchlorid erfolgt zur Beseitigung des sog. Salzfehlers; er ist erforderlich, weil Lebensmittelauszüge vielfach viel Natriumchlorid enthalten.
Bei Substanzen, die zum Teil in Wasser unlöslich sind, ein entsprechender wäßriger Auszug.
Der Zusatz von Bariumchlorid erfolgt zur Ausfällung der die Bestimmung der Aminosäuren beeinträchtigenden Phosphorsäure.
Die Entfärbung geschieht in der Weise, daß die Lösung mit Salzsäure schwach angesäuert, mit 2 g Tierkohle behandelt und darauf filtriert wird. Die Tierkohle absorbiert keine Aminosäuren.
Der Zusatz der Natronlauge zu B erfolgt aus dem Grunde, weil unter Umständen der Farbton der zu untersuchenden Flüssigkeit in A in alkalischer Lösung ein anderer sein kann als in neutraler.
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Vgl. H. Gardner: Lancet 1930, 219, 525; C. 1930, II, 2925.
Kalium-bzw. Natriumphosphat zu Enzymstudien nach Sörensen“ von C. A. F. Kahlbaum in Adlershof bei Berlin.
Ninhydrin wird von den Höchster Farbwerken in Ampullen von 0,1 g Inhalt geliefert.
L. Michaelis: Die Wasserstoffionenkonzentration, S. 171. Berlin 1914.
Liegen keine Anhaltspunkte über den annähernden Gehalt der Lösung an AminosäurenStickstoff vor, so sind außer der unverdünnten Lösung auch die Verdünnungen 1: 5, 1: 25 und 1: 125 usw. zur Untersuchung heranzuziehen.
Einzelne Reagensgläser dürfen während des Erhitzens nicht — auch nur vorübergehend nicht — aus dem Wasserbade genommen werden, weil die Ninhydrinreaktion in starkem Maße von der Zeit der Erhitzung abhängig ist.
Vgl. Anmerkung 1 auf S. 615.
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Über die Darstellung der Arginase siehe A. Hunter u. J. A. Daupbinee: Journ. Biol. Chem. 1930, 85, 627; C. 1930, I, 1834.
C. J. Weber: Journ. Biol. Chem. 1930, 86, 217; C. 1930, I, 3705.
Vgl. auch G Klein u. K. Tauböck: Biochem. Zeitschr. 1932, 251, 10, sowie E. JORPES u. S. THORÉN: Biochem. Journ. 1932, 26, 1504; C. 1933, I, 820.
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Der Name „Flaviansäure“ für die 1-Naphthol-2,4-dinitro-7-sulfosäure, die Säure des Farbstoffes Naphtholgelb S der I. G. Farbenindustrie, rührt von A. Kossel und R. E. Gross (Zeitschr. physiol. Chem. 1924, 135, 167) her.
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A. Kossel u. R. E. Gross: Zeitschr. physiol. Chem. 1924, 135, 167.
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Tryptophanlösungen scheiden daher nach P. Danila (Compt. rend. Soc. de biol. 1923, 88, 278; C. 1923, IV, 565) aus Jodsäurelösung beim Kochen Jod ab.
Biochem. Zeitschr. 1907, 2, 357.
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Vgl. auch O. Forth u. E. Nobel: Biochem. Zeitschr. 1920, 109, 103;
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Das Lösungsmittel kann Wasser, Salzlösung, Alkohol oder verdünnte - nicht über 5%ige Natronlauge sein.
E. Komm: Zeitschr. physiol. Chem. 1926, 156, 35, 161, 202.
J. Tillmans u. A. Alt: Biochem. Zeitschr. 1925, 164, 135.
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Die 0,1 N.-Salpetersäure muß etwas Salpetrige Säure enthalten und wird daher vorteilhaft aus einer konz. Salpetersäure hergestellt, die etwa 10% rauchende. Salpetersäure enthält (vgl. auch H. Bauer u. E. Strauss: Biochem. Zeitschr. 1929, 211, 191 ).
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Vgl. auch W. Ssolonina: Journ. russ. phys. chem. Ges. 29, 404; 31, 640; C. 1897, II, 848; 1899, II, 867.
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Vgl. auch H. Franzen u. A. Schneider: Biochem. Zeitschr. 1921, 116, 195.
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Vgl. auch F. OKoLOFF: Z. 1932, 63, 143.
Monomethylamin geht dabei in Methylen-methylamin und Dimethylamin in Tetramethyl-methylendiamin über, welche beide die Reaktion nicht stören sollen.
F. Okoloff: Z. 1932, 63, 143.
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H. Franzen u. A. Schneider: Biochem. Zeitschr. 1921, 116, 195.
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Über ein neues Nessler-FouNsches Reagens berichten F. C. Koch u. F. L. Mcmeekin (Journ. Amer. Chem. Soc. 1924, 46, 2066; Z. 1927, 53, 281 ).
S. S. Graves: Journ. Amer. Chem. Soc. 1915, 37, 1171; C. 1915, II, 364.
C. D. Zenghells: Compt. rend. Paris. 1921, 173, 153; C. 1921, IV, 1255.
K. G. Magnas: Zeitschr. analyt. Chem. 1930, 81, 212.
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G. Dentahs: Compt. rend. Paris 1920, 171, 177; C. 1920, IV, 456.
Über ein indirektes Verfahren, bei dem aus der Lösung durch Zusatz einer gemessenen Menge Lauge das Ammoniak weggekocht und der Laugenüberschuß mit Säure zurücktitriert wird, vgl. P. Sous (Chem.-Ztg. 1932, 56, 156 ).
A. Bayer: Chem.-Ztg. 1903, 27, 809.
Vgl. F. Okoloff: Z. 1932, 63, 129.
Ist die Lösung zu stark sauer, so daß zu ihrer Neutralisation viel Magnesiumoxyd gelöst wird, so ergeben sich nach K. Taufel und C. Wagner (Zeitschr. angew. Chem. 1928, 41, 285) Fehlbeträge an Ammoniak von 3–4%.
Vgl. E. Sellier: Die Bestimmung des Ammoniaks in pflanzlichen Produkten. Bull. Assoc. Chimistes Suer. Dist. 1902/03, 20, 649; 1904, 21, 1063, 1223; Z. 1903, 6, 754; 1904, 8, 555; 1905, 10, 166.
Auch A. Hahn u E Koorz (Biochem. Zeitschr. 1920, 105, 220) beschreiben ein auf der Verwendung von Natriumcarbonat beruhendes Verfahren zur Bestimmung von Ammoniak im Ham.
A. Schittenhelm: Zeitschr. physiol. Chem. 1903, 39, 73.
Auch CH. Schenitzky (Biochem. Zeitschr. 1916, 76, 177) empfiehlt dieses Verfahren.
P. Shaffer: Amer. Journ. Physiol. 1902, 8, 330; Z. 1904, 8, 161.
Natriumcarbonat soll nach den genannten Autoren weniger zersetzend auf etwa gleichzeitig vorhandene andere Stickstoffverbindungen einwirken als Magnesiumoxyd sowie Barium-und Strontiumhydroxyd. M. KRÜGER und 0. REICH (Zeitschr. physiol. Chem. 1903, 39, 165), welche ebenfalls die Destillation im Vakuum unter Alkoholzusatz empfehlen, schlagen zur Destillation die Verwendung von Kalkmilch oder Barytwasser vor, die im Gegensatz zum Magnesiumoxyd nicht zersetzend auf andere Stickstoffverbindungen wirken sollen.
Eine Erhöhung der Temperatur bis auf 530 ist auf die Genauigkeit der Bestimmung ohne Einfluß, doch nimmt mit dem Anstieg der Temperatur das Schäumen der Flüssigkeit stärker zu.
Tl. Rosolsäure wird in 500 Tln. 80%igem Alkohol gelöst.
F. A. Hoppe-Seyler: Mikrochemie 1932, 10, 446; C. 1932, I, 2870.
M. ST. Nichols U. M. E. FooTE: Ind. engin. Chem. Analyt. Edition 1931, 3, 311; C. 1931, II, 3019.
L. H.,Bailey: Cereal Chem. 1929, 6, 454; C. 1930, I, 411.
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Legler: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1883, 16, 1333.
Gaillot: Ann. Chim. analyt. appl. 1913, 18, 15.
L. W. Winkler: Zeitschr. angew. Chem. 1913, 26, 231; 1914, 27, 630.
Das Verfahren ist von E. Bernard (Zeitschr. angew. Chem. 1914, 27, 664;
Landw. Vers.-Stationen 1915, 86, 331), A. Schulze (Mitt. Landesamt. Wasserhyg. 1914, 18, 87; Z. 1916, 32, 501), F. Pilz (Zeitschr. landw. Versuchsw. Österreich 1915, 18, 55; Z. 1916, 32, 502) und L. Adler (Zeitschr. ges. Brauwesen 1916, 39, 162; Z. 1919, 38, 293) nachgeprüft und empfohlen worden.
O. Fol1n: Zeitschr. physiol. Chem. 1902, 37, 161.
O. Fol1n: Das Verfahren wird auch empfohlen von P. A. Kober u. S. S. Graves (Journ. Amer. Chem. Soc. 1913, 35, 1594; 1916, 38, 2568; Z. 1916, 32, 183 u. 1917, 34, 166.
L. Grünhut: Z. 1919, 37, 304.
Drechsel-Waschflaschen mit der Absorptionsvorrichtung liefert die Firma Joh. Greiner in München, Mathildenstr. 12.
K. Taufel u. C. Wagner: Zeitschr. angew. Chem. 1928, 41, 285.
P. 11. Praiisnitz: Chem.-Ztg. 1926, 50, 809.
Die Reaktion verläuft nach T. Teorell (Biochem. Zeitschr. 1932, 248, 246) stöchiometrisch nur zwischen p,I = 8,5–9; bei höherer Alkalität treten Abweichungen bis zu — 8% ein. Vgl. auch I. M. Kolmaoff und A. Lahr (Zeitschr. analyt. Chem. 1928, 73, 177 ).
Zu dieser Messung wurde früher das Knor-Wagnerache Az o to m e t e r verwendet.
CH. Porcher und M. Brrsac (Bull. Soc. Chim. Paris 1902, [3] 27, 1128) sowie Nicolas und Deland (Ann. Chim. analyt. app!.1905,10, 7) haben ein dem Gerslerschen Kohlensäurebestimmungsapparat ähnliches Azotometer empfohlen.
E. Rurr u. E. Rössler: Arch. Pharm. 1905, 243, 104.
Vgl. ferner P. Artmann u A Sxrabal (Zeitschr. analyt. Chem. 1907, 46, 5), P. Artmann (Chem.-Ztg. 1911, 35, 50) und M. B. DONALD (Analyst 1924, 49, 375; Z. 1925, 49, 56 ).
W. Manchot und F. Oberhauser (Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1924, 57, 29) titrieren den Bromüberschuß mit Arseniger Säure zurück.
Die Titerbeständigkeit der Lauge ist nach Run, und RÖSSLER eine ziemlich gute, da die durch Autoxydation des Hypobromids zu Bromat entstehende Veränderung auf das Titrationsergebnis in saurer Lösung ohne Einfluß ist.
T. Teorell: Biochem. Zeitschr. 1932, 248, 246.
F. Artmann: Chem.-Ztg. 1911, 35, 64.
Das Naphthylrot, das vielfach als acidimetrischer Indicator verwendet wird, kann von der Firma F. C. Kahlbaum-Berlin bezogen werden.
L. W. Winkler: Z. 1925, 49, 163.
L. W. Winkler: Chem.-Ztg. 1899, 23, 454, 541; 1901, 25, 586.
Vgl. R. Fresenius: Lehrbuch der analytischen Chemie, Bd. 1, S. 225 b.
CH. Scienitzky: Biochem. Zeitschr. 1916, 76, 177.
S. S. Graves: Journ. Amer. Chem. Soc. 1915, 37, 1171; Z. 1921, 41, 36.
K. G. Makris: Zeitschr. analyt. Chem. 1931, 84, 241.
J. Froinevaux: Compt. rend. Paris 1923, 177, 1043 u. Ann. Falsif. 1924, 17. 72; Z. 1926, 52, 338 u. 1927, 53, 281.
C. Reichard: Chem.-Ztg. 1903, 27, 979, 1007.
E. Riegler: Zeitschr. analyt. Chem. 1903, 42, 677.
Löst man das Diphenylamin nicht in Schwefelsäure, sondern in Salzsäure oder Essigsäure, so soll nach C. H. Hinrichs (Bull. Soc. Chim. Paris 1905, 93, 1002; Z. 1907, 13, 29) die Reaktion mit Nitraten schon in der Kälte eintreten, während die Reaktionen mit den übrigen Verbindungen erst beim Erwärmen auf mindestens 50° eintreten.
Das Diphenylbenzidin, welches F. Kehrmann und ST. Micewicz (Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1912, 45, 2641), sowie H. Wieland (Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1913, 46, 3296) als Zwischenverbindung der Reaktion nachgewiesen haben, ist von Marqueyrol und H. Muraour (Bull. Soc. chim. France 1914, [4] 15,186; C.1914, I, 1427) sowie von E. A. Letts und F. W. Rea (Journ. Chem. Soc. London 1914, 105, 1157; C. 1914, II, 263) zum Nachweis und zur Bestimmung der Salpetersäure vorgeschlagen. Es ist ungefähr doppelt so empfindlich wie Diphenylamin. L. Smith (Zeitschr. analyt. Chem. 1917, 56, 28) bestätigt diese Angabe - H. Riehm (Zeitschr. analyt. Chem. 1930, 81, 439) weist darauf hin, daß es sich bei der Diphenylbenzidinreaktion um dieselbe chemische Reaktion wie bei der Diphenylaminreaktion handelt, daß die letztere aber sich als praktisch brauchbarer erweist. Nur in Fällen, wo eine erhöhte Empfindlichkeit und eine größere Reaktionsgeschwindigkeit wünschenswert ist, ist Diphenylbenzidin vorzuziehen. M. Whelan (Journ. Biol. Chem. 1930, 86, 189; C. 1930, I, 3705) empfiehlt daher die Reaktion mit Diphenylbenzidin zum Nachweise und zur Bestimmung geringer Mengen von Nitraten und Nitriten in biologischen Flüssigkeiten.
Marqueyrol und Muraour geben ein Verfahren zur Darstellung des Diphenylbenzidins an.
H. Riehm: Zeitschr. analyt. Chem. 1930, 81, 353, 439.
J. Tillmans: Z. 1910, 20, 690.
Nach L. Ekeert (Pharm. Zentralh. 1925, 66, 649) soll die Reaktion noch empfindlicher sein, wenn man Phosphorsäure statt Schwefelsäure verwendet.
Da die meiste konzentrierte Schwefelsäure des Handels etwas Salpetersäure enthält, zeigt das Reagens vielfach geringe Blaufärbung; in diesem Falle erhitzt man das Reagens nach W. Tönius (Z. 1916, 31, 322) auf 110° oder nach H. Riehm auf 160°, bis die Blaufärbung verschwunden ist. Statt dessen kann man auch nach A. Sciwicker (Z. 1916, 32, 129) die konz. Schwefelsäure vorher mit 4–5 g Natriumchlorid oder nach H. Riehm (Zeitschr. analyt. Chem. 1930, 81, 353 u. 439) besser mit 5 g Kaliumchlorid je Liter 15 Minuten kochen.
Auf die Steigerung der Empfindlichkeit der Reaktion durch den Zusatz von Natriumchlorid bzw. von Salzsäure hat zuerst R. Cimmino (Zeitschr. analyt. Chem. 1899, 38, 429) hingewiesen. Die Wirkung der Salzsäure hierbei erläutert H. Riehm (Zeitschr. analyt. Chem. 1930, 81, 353); es entstehen bei der Einwirkung von Salpetersäure auf die Salzsäure Nitrosylchlorid (NOC1) und freies Chlor, die eine stärkere Oxydationswirkung herbeiführen als die Salpetersäure; andererseits ist die Salpetrige Säure in ihrer Oxydationswirkung stärker als die Salpetersäure, so daß bei ihr ein Zusatz von Salzsäure nicht erforderlich ist.
J. Tillmans: Z. 1910, 20, 679.
J. Tillmans: Daselbst findet sich auch eine Zusammenstellung der älteren Literatur über die Diphenylaminreaktion.
J. Tillmans u. W. Sutthoff: Zeitschr. analyt. Chem. 1911, 50, 473.
L. W. Winkler in Lunge-Berl: Chemisch-technische Untersuchungsmethoden, B. Aufl., Bd. II, 1. Berlin: Julius Springer 1932.
Vgl. Anmerkung 5, S. 650.
M. Busch: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1905, 38, 4055.
L. v. Liebermann u. D. AcÉL: Hygien Rundschau 1915, 25, 805; C. 1916, I, 266.
Vgl. auch D. Acél: Z. 1916, 31, 332;
J. Blom: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1926, 59, 121.
F. L. Hahn u. G. Jaeger: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1925, 58, 2335.
J. Schmidt u. H. Lumpt: Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1910, 43, 794.
H. Wolf u. E. Heymann: Zeitschr. angew. Chem. 1924, 37, 195.
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Das Verfahren ist nach O. Ruff und E. Gersten (Zeitschr. anorgan. allg. Chem. 1911, 71, 419) bei Gegenwart von Arseniten und Sulfiden nicht verwendbar.
TH. Schlösing: Journ. prakt. Chem. 1854, 62, 142.
P. Lmcuri und E. Ritter (Zeitschr. analyt. Chem. 1903, 42, 205; 1904, 43, 168) fanden im Gegensatz zu TH. Pfeiffer und H. Thurmann (Landw. Vers.-Stationen 1896, 46, 1) und TH. Pfeiffer (Zeitschr. analyt. Chem. 1903, 42, 612) bei einer eingehenden Nachprüfung des ScnLÖsrsuschen Verfahrens in Übereinstimmung mit zahlreichen älteren Arbeiten, daß die gefundenen Werte für Nitratstickstoff durch die Gegenwart größerer Mengen Ammoniumsulfat etwa 1% und von Harnstoff etwa 1,9% (in Prozent des Nitratstickstoffs) niedriger ausfallen als bei reinen Salpeterlösungen.
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Die „Arndsohe Legierung“ liefert die Aluminium-Magnesium-Fabrik A. G. in Hemelingen bei Bremen.
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Buses hatte ursprünglich empfohlen, die Fällung 1–11/2 Stunden in Eiswasser zu stellen.
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Vgl. auch K. Krog u. J. Sebelien: Chem.-Ztg. 1911, 35, 145.
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Über die Verwendung von Diphenylbenzidin an Stelle von Diphenylamin siehe An-merkung 2 auf S. 650.
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Der Zustaz des Eisessigs verhindert das Bakterienwachstum; die damit hergestellten Vergleichslösungen sind haltbar.
L. Smith (Zeitschr. analyt Chem. 1917, 56, 28), der die Brauchbarkeit des Verfahrens bestätigt, hat vorgeschlagen, die Reaktionsflüssigkeit zu rühren anstatt zu schütteln, weil durch letzteres eine Abnahme der Färbung eintreten könne. J. Tillmans (Zeitschr. analyt. Chem. 1917, 56, 509) hält diese Abänderung für überflüssig.
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Die Aminosulfonsäure wird nach dem Verfahren von P. Baumgarten (Ber. Deutsch. Chem. Ges. 1926, 59, 1978) dargestellt.
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Vgl. dazu W. Plucker: Z. 1934, 48, 187.
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Vgl. auch W. Plücker: Z. 1934, 68, 187.
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Der Titer der 0,01 N.-Kaliumbromatlösung muß natürlich mittels Kaliumjodid und Thiosulfatlösung genau eingestellt werden.
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Vgl. auch W. Plückzr: Z. 1934, 68, 187.
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F. Gantter: Das Verfahren ist auch von J. Gailbat (Journ. Pharm. Chim. 1900, (6) 12, 9; C. 1900, II, 397) empfohlen worden.
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Der Harnstoff wirkt dabei in gleicher Weise wie das Ammoniumchlorid auf das Nitrit.
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Das Verfahren kann daher auch zur Bestimmung einwertiger Alkohole dienen; vgl. den Abschnitt Alkoholbestimmung S. 985.
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E. Szab: Z. 1930, 60, 389.
Nach den Ergebnissen von W. Plücker ist die Titration nach 5 Minuten zu empfehlen.
W. Plucker: Z. 1934, 68, 187.
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Bömer, A. (1935). Stickstoffverbindungen. In: Balls, A.K., et al. Allgemeine Untersuchungsmethoden. Handbuch der Lebensmittelchemie, vol 2 / 2. Springer, Berlin, Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-662-02244-3_3
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