Zusammenfassung
Aminosäuren sind Verbindungen, die sowohl die Säuregruppe —COOH als auch die Aminogruppe —NH2 (oder Iminogruppe NH) enthalten.
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Literatur
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S. Akabori et al., ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7081: zu 6,46% aus einem Protein einer Amylase aus Aspergillus oryzae.
R. Barre, Bull. Soc. Chim. biol. 1953, 35 907, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 5891: bis zu 3,4% in den Proteinen der Mandel.
J. Liebig, A. 1847, 62 257 resp. 310: aus Kreatinin erhalten; Name.
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C. E. Dalgliesh, A. W. Johnson, A. R. Todd u. L. C. Vining, Soc. 1950, 2946: aus dem Antibioticum Actinomycin B.
H. Brockmann, N. Grubhofer, W. Kass U. H. Kalbe, Naturw. 1950, 37, 494, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 7997; B. 1951, 84 260: aus dem Antibioticum Actinomycin C.
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H. Brockmann, G. Bohnsack u. H. GRÖNE, Naturw. 1953, 40 223: SarkosinGehalt bei den versch. Actinomycinen.
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P. SchÜTzenberger U. A. Bourgeois, ref. B. 1876, 9 62: erstmalige Isolierung der natürl. Verb., u. zwar zu 30% aus Seidenfibroin.
H. B. Vickery, J. Biol. Chem. 1925, 65 657: frei aus Luzernesaft isoliert.
L. Fowden,. Nature 1951, 167 1030, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 9623: grosse Mengen in Algen, anscheinend in freiem Zustand.
H. Michl u. H. Kuhn, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 4947: frei in versch. Tabaksorten nachgewiesen.
K.Okazaki U. O. Tamemasa, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 3548: frei zu 0,8% im Pilz Trichophyton asteroides.
E. Abderhalden, Z. physiol. Ch. 1903, 37 499: zu 3,6% aus Edestin der Hanfsamen.
E. Abderhalden u. O. Rostoski, Z. physiol. Ch. 1905, 44 265: zu 4,5% aus «Edestin» der Baumwollsamen.
T. B. Osborne u. S. H. Clapp, ref. C. 1907, I, 485: zu 4,65 resp. 4,45% aus den Eiweissfraktionen «Glutenin» resp. «Leukosin» des Weizenkorns.
T. B. Osborne u. L. M. Liddle, ref. C. 1910, II, 839: zu ca. 9,8% aus der ZeinEiweissfraktion der Mais-Samen.
E. Winterstein n. C. Reuter, ref. C. 1912, II, 935: rarem. Alanin aus dem Steinpilz = Boletus edulis.
B. Sjollema u. J. J. Rinkes, Z. physiol. Ch. 1912, 76 368: zu 4,9% aus Kartoffel-Eiweiss.
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E. Abderhalden u. A. Bahn, Z. physiol. Ch. 1937, 245, 246: erstmaliger, einwandfreier Nachweis des natürl. Vorkommens, u. zwar in Hydrolysaten von Hefeeiweiss u. von Edestin.
H. Friese, R. Benze, H. Pommer u. R. Wiebeck, B. 1942, 75, 1996: aus Roggenkeimen isoliert.
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E. Schulze u. J. Barbieri, J. pr. Chem. 1883, 27, 337, ref. B. 1883, 16 1496: aus Keimlingen v. Lupinus luteus.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1896/97, 22, 411; 1900, 30 241: aus 2–3 Wochen alten, etiolierten Keimpflanzen von Vicia sativa, Lupinus albus, L. luteus u. L. angustifolius.
E. Fischer, B. 1906, 39 2320: Spaltung der synthet. Säure in die opt. Komponenten; Name Valin.
H. B. Vickery, J. Biol. Chem. 1925, 65 657: frei aus dem Saft der Luzerne isoliert. H. Friese, R. Benze, H. Pommer U. R. Wiebeck, B. 1942, 75 1996: frei aus Roggenkeimen isoliert.
K. Okazaki u. O. Tamemasa, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 3548: frei zu 1,5% im Pilz Trichophyton asteroides.
P. A. Levene u. D. D. Van Slyke, J. Biol. Chem. 1909, 6 419: zu 5,6% im Edestin.
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T. B. Osborne u. H. H. Guest, J. Biol. Chem. 1911, 9 425: zu 3,34% aus Weizengliadin.
Y. Kotake u. F. Knoop, Z. physiol. Ch. 1911, 75, 488: zu 2,43% aus einem krist. Eiweisstoff aus dem Milchsaft v. Antiaris toxicaria.
D.B. Jones u. C. O. Johns, J. Biol. Chem. 1920, 44, 291: zu 3,57% aus dem Globulin der Kokosnuss.
E. L. Smith, R. D. Greene U. E. Bartner, J. Biol. Chem. 1946, 164 159: krist. Samenglobuline von Hanf, Tabak u. versch. Cucurbitaceen - Kürbis, Gurke, Wassermelone - enthalten 6,5–7% Valin.
H. J. Buehler, E. J. Schantz u. C. Lamanna, J. Biol. Chem. 1947, 169 295: zu 4,45% im Proteinhydrolysat v. Clostridium botulinum Typ A.
W. E. Belton u. C. A. Hoover, J. Biol. Chem. 1948, 175 377: zu 6,16% im Eiweisshydrolysat der Mungobohne von Phaseolus aureus Roxb.
K. A. Kuiken u. C. M. Lyman, J. Biol. Chem. 1949, 177 29: zu 5,3% im Soj amehlhydrolysat.
A. H. Cook, S. F. Cox u. T. H. Farmer, Soc. 1949, 1022: aus den Hydrolysaten der Antibiotica Lateritiin I u. II, Avenacein, Fructigenin u. Sambucinin; Synthese.
C. E. Dalgliesh u. A.R. Todd, Nature 1949, 164 830, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 2073; C. E. Dalgliesh, A. W. Johnson, A. R. Todd U. C. V. Vining, Soc. 1950, 2946: aus dem Antibioticum Actinomycin B.
H. Brockmann, G. Bohnsack u. H. GRÖNE, Naturw. 1953, 40 223: N-MethylL-valin-Gehalt der versch. Actinomycine.
E. v. Gorup-Besanez, B. 1874, 7, 146, 569: aus dem Saft von etiolierten Wickenkeimlingen; das 1863 von H. ReinscH aus dem Saft von Chenopodium album isolierte «Chenopodin» ist mit Lducin ident.
E. Schulze u. J. Barbieri, B. 1879, 12 1924: frei aus Lupinekeimlingen u. in geringer Menge in Kartoffelknollen.
E.O. v. Lippmann, B. 1884, 17 2835: aus Rübenmelasse.
E. Schulze u. A. Lieiernik, B. 1891, 24 669; Z. physiol. Ch. 1893, 17 513: Konst.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1900, 30 241: aus etiolierten Keimlingen v. Vicia sativa = Wicke, Pisum sativum, Lupinus albus u. L. luteus.
E. Fischer, B. 1900, 33, 2370: Synthese.
E. Schulze, J. Barbieri u. E. Bosshard, Z. physiol. Ch. 1885, 9 63: aus dem Hydrolysat des Proteins von Kiirbissamen u. von Samen der gelben Lupine.
E. Abderhalden,. Z. physiol. Ch. 1903, 37, 499: zu 20,9% aus Edestin der Hanfsamen.
E. Abderhalden u. O.Rostosxii, Z. physiol. Ch. 1905, 44, 265: zu 15,5% aus «Edestin» der Baumwollsamen.
E. Abderhalden u. Y. HÄMÄLÄInen, Z. physiol. Ch. 1907, 52, 515: zu 15% aus Avenin (ein Protein aus Hafer).
T. B. Osborne u. S. H. Clapp, ref. C. 1908, I, 1188: zu 18,6% aus Zein (aus Mais). H. D. Dakin, Z. physiol. Ch. 1923, 130 159: zu ca. 25% aus Zein.
E. L. Smith u. R.D. Greene, J. Biol. Chem. 1947, 167 833: nur zu 7,4% aus Edestin (aus Hanfsamen).
J. C. Lewis u. N. S. Snell, Am. Soc. 1951, 73 4812: zu 15,5% im Antibioticum Subtilin.
K.Okazaki u. O.Tamemasa, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 3548: frei zu 2,1% im Pilz Trichophyton asteroides.
F. Ehrlich, B. 1904, 37, 1809: im pflanzl. Eiweiss entdeckt, u. zwar im Saft der Zuckerrübe resp. in den Melasseschlempen u. im Hydrolysat von Getreidekleber; Name
F. Ehrlich, B. 1907, 40 2538: Konst. u. Synthese.
E. Schulze u. E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1905, 45 38: aus etiolierten Keimlingen v. Vicia saliva.
E. Winterstein u. E. Pantanelli, Z. physiol. Ch. 1905, 45 61: aus den Eiweisshydrolysaten der Samen v. Lupinus albus u. L. hirsutus.
E.L. Smith u. R.D. Greene, J. Biol. Chem. 1947, 167 833: zu 5–6,3% aus den Samenproteinen von Hanf, Tabak, Kürbis, Gurke u. Wassermelone.
K. A. Kuiken u. C. M. Lyman, J. Biol. Chem. 1949, 177 29: zu 5,3% aus Sojabohneneiweiss.
L. W. MC Elroy, D. R. Clandinin, W. Lobay U. S. J. Pethybridge, J. Nutr. 1949, 37 329: zu 4–5% aus den Proteinen von Weizen, Gerste u. Hafer.
H. J. Buehler, E. J. Schantz u. C. Lamanna, J. Biol. Chem. 1947, 169 295: zu 10,33% aus dem krist. Toxin v. Clostridium botulinum Typ A.
L. C. Craig, W. Hausmann u. J. R. Weisiger, J. Biol. Chem. 1952, 199 865: zu 14,6% aus Bacitracin A.
PL. A. Plattner u. U. Nager, Helv. 1948, 31 2192: Hydrolyseprodukt aus dem Antibioticum Enniatin A.
E. Abderhalden u. W. Zeisset, Z. physiol. Ch. 1931, 195 121: synthet. Darst. der beiden opt. aktiven Allo-isoleucine.
H. Brockmann u. N. Grubhofer, Naturw. 1950, 37, 494, ref. Chem. Abstr. 1951, 45 7997; H. Brockmann, N. Grubhofer, W. Kass u. H. Kalbe, B. 1951, 84 260: zu 24% im kristallisierten Aminosäure-Gemisch aus dem Antibioticum Actinomycin C.
H. Brockmann, G. Bohnsack u. H. GRÖNE, Naturw. 1953, 40 223: D-Alloisoleucin-Gehalt von Actinomycin C2 u. Actinomycin C3.
J. L. W. Thudichum, 1881: aus Rinderhirn ein Leucinisomeres isoliert; Name Glykoleucin.
E. Schulze u. A. Likiernik, Z. physiol. Ch. 1893, 17 513 resp. 523: Darst. der opt. inaktiven a-Amino-n-capronsäure aus Gärungscapronsäure u. Gewinnung der opt. links drehenden Komponente durch Einwirkung von Penicillium glaucum auf die inaktive Aminosäure.
E. Fischer u. R. Hagenbach, B. 1901, 34 3764: Spaltung der DL-Säure.
E. Abderhalden u. A. Weil, Z. physiol. Ch. 1912, 81 207; 1913, 84 39: Auffinden der rechts drehenden a-Amino-n-capronsäure im Hydrolysat der Proteine der Nervensubstanz. (Das Vorkommen von Norleucin in der Nervensubstanz konnte später nicht mehr bestätigt werden, s. Biochem. J. 1945, 39 251; Z. physiol. Ch. 1952, 289 85.)
E. Abderhalden, C. Froehlich u. D. Fuchs, Z. physiol. Ch. 1913, 86 454: Name Norleucin für die a-Amino-n-capronsäure.
R. Nuccorini, ref. C. 1934, II, 453: angeblich aus dem Hydrolysat der Samen v. Ricinus communis erhalten.
E. Schulze u. J. Barbieri, B. 1881, 14 1785: aus etiolierten Keimlingen von Lupinus luteus; Bezeichnung Phenylaminopropionsäure; Bruttoformel.
E. Erlenmeyer u. A. Lipp, B. 1882, 15 1006: synthet. Darst. der opt. inaktiven. Phenyl-a-aminopropionsäure; Name Phenylalanin.
E. Schulze u. J. Barbieri, B. 1883, 16 1711; E. Schulze u. E. NÄGeli, Z. physiol. Ch. 1887, 11 201: die natürl. vorkommende Verb. ist eine opt. aktive Form des synthet. Phenylalanins.
A.Menozzi, ref. B. 1888, 21 Ref. 619: aus etiolierten Keimlingen v. Phaseolus vulgaris.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1892, 17 193: aus etiolierten Keimlingen von Vicia sativa = Futterwicke.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1896, 22 411: aus etiolierten Keimlingen v. Lupinus albus.
L. Langstein, Z. physiol. Ch. 1903, 37, 508: zu 6,96% im Zein aus Mais. T.B.Osborne u. S. H.Clapp, ref. C. 1907, II, 1799: zu 5,03% aus Hordein des Gerstenmehls.
T. B. Osborne u. F. W. Heyl, ref. C. 1908, II, 1188: zu 5,27% aus dem Protein der Samen von Vigna sinensis.
H. D. Dakin, Z. physiol. Ch. 1923, 130 159: zu 7,6% aus Zein (aus Mais).
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E. L. Smith u. R. D. Greene, J. Biol. Chem. 1947, 167 833: zu 5,5–7,7% aus den Samenglobulinen von Hanf, Tabak, Kürbis, Gurke, Wassermelone.
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A. R. Battersby u. L. C. Craig, Am. Soc. 1952, 74 4019; A. Paladini u. L.C.
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R. BarrÉ, Bull. Soc. Chim. biol. 1953, 35, 907, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 5891: bis 4,75% in den Proteinen der Mandel.
S. Akabori et al., ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7081: zu 6,35% aus einem Protein einer Amylase aus Aspergillus oryzae.
M. Takagi, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 1151: in Meeresalgen zu 5–20% der Gesamtproteine.
R. H. Mc Coy, C. E. Meyer U. W. C. Rose, J. Biol. Chem. 1935, 112 283: aus Fibrin-Hydrolysat eine a-Amino-ß-oxybuttersäure isoliert.
C. E. Meyer u. W. C. Rose, J. Biol. Chem. 1936, 115 721: Name Threonin, weil Konfiguration wie bei D-Threose.
H. D. West u. H. E. Carter, J. Biol. Chem. 1937, 119 103 u. 109: Synthese.
E. L. Smith u. R. D. Greene, J. Biol. Chem. 1947, 167 833: zu 2,6–4,1% aus den Samenglobulinen von Hanf, Tabak, Kürbis, Gurke, Wassermelone.
K. A. Kuiken u. C. M. Lyman, J. Biol. Chem. 1949, 177 29: zu 3,9% aus Sojabohnenmehl.
V. S. Ruiz, V. V. Palast U. P. A. Irigoyen, ref. Chem. Abstr. 1949, 43, 1449: zu 3,3% aus dem Protein der Samen von Lathyrus sativus.
L. W. MC Elroy, D. R. Clandinin, W. Lobay U. S. J. Pethybridge, J. Nutr. 1949, 37, 329: zu 2,7–3,0% aus Hydrolysaten von Weizen, Gerste u. Hafer. H. J. Buehler, E. J. Schantz U. C. Lamanna, J. Biol. Chem. 1947, 169 295: zu 7,19% aus dem krist. Clostridium botulinum Typ A-Toxin.
E. B. Slack, Nature 1948, 161 211: zu 3,7% im Eiweiss der Kartoffelknolle.
S. Akabori et al., ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7081: zu 10,48% aus einem Protein einer Amylase aus Aspergillus oryzae.
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W. W. Ackermann u. H. Kirby, J. Biol. Chem. 1948, 175, 483: Nachweis im Hydrolysat von Escherichia coli-Zellen.
TH. Wieland u. W. SchÖN, A. 1955, 593 157: Hydrolyseprodukt aus dem Peptici Phalloidin (s. Nr. 2440); Name; Konst.
J.Liebig, A. 1846, 57, 127: aus Käse isoliert.
Nach A. 1847, 64, 38 stammt der Name Tyrosin auch von J. Liebig. F.Bopp, A. 1849, 69 16 resp. 20: Isolierung aus tier. Eiweisstoffen.
L. Barth, A. 1869, 152 96 resp. 100: Konst.
E. Schulze u. J. Barbieri, B. 1878, 11 710, 1233: in geringer Menge aus Kürbiskeimlingen.
E. Schulze, B. 1879, 12 1924: in geringer Menge in Lupinekeimlingen u. in Kartoffelknollen.
E. Erlenmeyer u. A. Lipp, B. 1882, 15 1544: Synthese der opt. inaktiven Verb. und Konst.-Beweis.
E.O. Von Lippmann, B. 1884, 17 2835: aus Zuckerrüben-Melasse.
A. v. Planta, B. 1890, 23, 1699: aus Wurzelknollen v. Stachys tuberifera.
E. Bourquelot u. H. HÉRissey, J. Pharm. Chim. 1898, [6] 8 385, ref. C. 1898, II, 1180: in der grünen Hülse v. Vicia f aba = Saubohne.
E. Fischer, B. 1899, 32, 2451, 3638: Spaltung der synthet. Verb.
M. Bamberger u. A. Landsiedl, M. 1904, 25 1030: in der Wurzel der Sellerie = Apium graveolens.
E. Schulze u. E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1910, 65 431: in reifenden Samen v. Pisum sativum.
S. FRänkel u. J. Rainer, Biochem. Z. 1916, 74, 167: in Extrakten v. Secale cornutum.
H. B. Vickery, J. Biol. Chem. 1924, 60 647; 1925, 65 657: geringe Mengen im Saft der Luzerne.
TH. J. DeMan, Naturw. 1943, 31 492, ref. Chem. Abstr. 1944, 38 3689: frei in Lolium perenne.
P. Correale u. E. Cortese, Naturw. 1953, 40 57; 1954, 41 139, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 11357; 1955, 49 3318: frei in den Zweigen, Blüten u. Keimen des Besenginsters = Sarothamnus scoparius.
F. Kutscher, Z. physiol. Ch. 1903, 38 111: bis zu 10% aus Zein (aus Mais).
E.L. Smith u. R. D. Greene, J. Biol. Chem. 1947, 167 833: zu 4,0–4,6% in Samenglobulinen von Hanf, Tabak, Kürbis, Gurke, Wassermelone.
V. V. Palasý, A. S. Ruiz u. F. S. Dominguez, ref. Chem. Abstr. 1949, 43, 1449: zu 6,0% aus dem Samenprotein von Lathyris sativus.
H. J. Buehler, E. J. Schantz U. C. Lamanna, J. Biol. Chem. 1947, 169 295: zu 12,18% aus dem krist. Clostridium botulinum Typ A-Toxin.
S. Akabori et al., ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7081: zu 9,20% aus einem Protein einer Amylase aus Aspergillus oryzae.
C. R. Harington u. R. V. P. Rivers, Biochem. J. 1944, 38 320: synthet. dargest. J. Roche u. Y. Yagi, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 1241: die Algen Laminaria flexicaulis u. L. saccharina können Mono- u. Dijodtyrosin bilden.
C. B. Coulson, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 2838: im alkalischen Protein-Hydrolysat der Alge Porphyra umbilicalis nachgewiesen.
R. Scott, Nature 1954, 173 1098: über das Vorkommen jodierter Aminosäuren (also auch Mono- u. Dijodtyrosin) in Meeresalgen.
E. Drechsel, ref. B. 1896, 29 Ref. 428: im’ Eiweiss der Koralle Gorgonia carolinii entdeckt; Name Jodgorgosäure.
M. Henze, Z. physiol. Ch. 1907, 51 64: Dijodtyrosin aus Tyrosin dargestellt; Jodgorgosäure ist mit Dijod-DL-tyrosin ident.
J. Roche u. M. Lafon, C. r. 1949, 229 481: in kleinen Mengen aus den Algen Laminaria flexicaulis u. L. saccharina nach Hydrolyse isoliert.
J. Roche u. Y. Magi, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 1241: die Algen Laminaria flexicaulis u. L. saccharina können Dijodtyrosin bilden.
C. B. Coulson, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 2838: im alkalischen Hydrolysat der Proteine versch. Meeresalgen nachgewiesen.
E. G. Kendall, J. Biol. Chem. 1919, 39, 125: Isolierung aus der Schilddrüse; Name.
CH. R. Harington, Biochem. J. 1926, 20 293: Bruttoformel; zur Konst. CH. R. Harington u. G. Barger, Biochem. J. 1927, 21 169: Konst.
C. B. Coulson, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 2838: im alkalischen Hydrolysat der Proteine versch. Meeresalgen nachgewiesen.
E. Ruge, J. pr. Chem. 1865, 96 106: Name Ratanhin; Bruttoformel.
O. Hiller-Bombien, Arch. Pharm. 1892, 230 513: Surinamin, Geoffroyin, Ratanhin u. Angelin sind identisch, u. zwar N-Methyltyrosin; neuer Name Andirin; wurde auch noch aus den Rinden anderer Andira-Arten isoliert.
E. Friedmann u. S. Gutmann, Biochem. Z. 1910, 27 491: Synthese der opt. inaktiven Verb.
E. Fischer u. W. Lipschitz, B. 1915, 48 360: Synthese von opt. akt. N-Methyltyrosin, das mit dem natürl. ident. ist.
C. Funk, Soc. 1911, 99 554: Synthese der opt. inaktiven Verb.
T. Torquati, ref. C. 1913, II, 517, 518: aus den Keimlingen u. Samenhülsen v. Vicia faba = Saubohne.
M. Guggenheim, Z. physiol. Ch. 1913, 88 276: zu ca. 0,25% aus den Fruchtschalen v. Vicia Tabu; Brutto- u. Konst.- Formel.
E. R. Miller, J. Biol. Chem. 1920, 44, 481: aus der Samtbohne = Bohne v. Seizolobium deeringianum Bort.
E. Waser u. M. Lewandowski, Heiv. 1921, 4 657: Synthese der L-Verb.
M. Damodaran u. R. Ramaswamy, Biochem. J. 1937, 31 2149: zu 1,5% aus den Samen von Mucuna pruriens.
P. Correale u. E. Cortese, Naturw. 1953, 40 57, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 11357: in den Zweigen u. Blüten des Besenginstcrs = Sarothamnus scoparius.
L. Pasteur, A. 1851, 80 148: über opt. Aktivität der Asparaginsäure.
H. Kolbe, A. 1862, 121 232: Konstitution.
E. Fischer, B. 1899, 32, 2451: Zerlegung der racem. Asparaginsäure in die opt. aktiven Komponenten.
M. Mercadante, ref. B. 1875, 8 823: in 10–25 cm grossen Keimlingen v. Phaseolus vulgaris u. Lupinus luteus.
E. Schulze u. J. Barbieri, B. 1878, 11 710: in Kürbis-Keimlingen. Z. Mimuroto, ref. C. 1913, I, 1036: frei in Maulbeerblättern.
A. C. Chapman, Soc. 1914, 105 1895: frei im Hopfen.
A. I. Virtanen u. T. Laine, Nature 1938, 141 748, ref. C. 1938, II, 1622: als 1. Aminosäure bei der N-Bindung in den Leguminoseknöllchen wird (-)Asparaginsäure festgestellt.
E. Abderhalden, Z. physiol. Ch. 1903, 37 499: zu 4,5% aus Hanf-Edestin.
E. Abderhalden u. B. Babkin, Z. physiol. Ch. 1906, 47, 354: zu 4% aus dem Legumin der weissen Bohne.
E. Abderhalden U. O. Berghausen, Z. physiol. Ch. 1906, 49 15: Zu 4,5% aus dem Protein der Kürbissamen.
E. Abderhalden u. Y. HÄMÄLÄInen, Z. physiol. Ch. 1907, 52 515: zu 4% aus dem Avenin des Hafers.
D. B. Jones u. C.O. Johns, J. Biol. Chem. 1919, 40 435: zu 9,23% aus dem Globulin Stizolobin aus der chines. Samtbohne = Stizolobium niveum.
D.B. Jones u. C.O. Johns, J. Biol. Chem. 1920, 44, 291: zu 5,12% aus dem Kokosnuss-Protein.
D. B. Jones, C. E. F. Gersdorff u. O. Moeller, J. Biol. Chem. 1925, 64 655: zu 7,72% aus dem Albumin der inneren, hellgefärbten Rindenteile der Akazie= Robinia pseudacacia.
M. S. Dunn, M. N. Camien, S. Shankman u. H. Block, Arch. Biochem. 1948, 18 195: zu 4,5% in den Proteinen der Sojabohne.
M. J. Levyant, V. N. Orekhovich u. N. E. Plotnikova, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 5100: zu 13,7% im Glycinin (Globulin aus der Sojabohne).
L. C. Craig, W. Hausmann U. J. R. Weisiger, J. Biol. Chem. 1952, 199 865: DL-Verb. zu 14,7% in dem Antibioticum Bacitracin A.
R. BarrÉ, Bull. Soc. Chim. biol. 1953, 35 907, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 5891: zu 8–8,5% in den Proteinen der Mandel.
S, Akabori et al., ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7081: zu 16,2% aus dem Protein einer Amylase aus Aspergillus oryzae.
R. Piria, ref. A. 1848, 68 343: aus 60 cm grossen Wickenkeimlingen von 10 kg Samen wurden 150 g erhalten; Bruttoformel.
E. Schulze, W. Umlanft u. A. Urich, ref. B. 1876, 9 1314: aus etiolierten Lupinekeimlingen bis 25% des Trockengewichtes.
J. Guareschi, ref. B. 1876, 9 1435: Konst.
M. Bergmann, L. Zervas u. L. Salzmann, B. 1933, 66 1288: Synthese.
W. Stepka u. W. N..Takahashi, Science 1950, 111 176, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 4967: Nachweis im Protein des Tabak-Mosaikvirus.
F. C. Steward u. J. F. Thompsen, Nature 1952, 169 739, ref. Chem. Abstr. 1954, 47, 2705: neue Strukturformulierung:
L. Wolff, A. 1890, 260 79 resp. 118: Konst.-Beweis durch Synthese der optisch inaktiven Verb.
T. B. Osborne u. R. D. Gilbert, ref. C. 1906, I, 1176: 37,17% aus dem Gliadin des Weizens, 33,8% aus dem Gliadin des Roggens, 36,35% aus dem Hordein der Gerste, 20–30% aus dem Conglutin der Lupinesamen; 23,14% aus dem Amandin der Mandel usw.
H. D. Dakin, Z. physiol. Ch. 1923, 130 159: 31,3% aus dem Zein (aus Mais).
D. B. Jones u. R. Wilson, ref. C. 1929, I, 1401: 43% aus Gliadin.
A. I. Virtanen, A.-M. Berg U. S. Kari, ref. Chem. Abstr. 1948, 48 10842: frei im Samen der Erbse.
L. Fowden, Nature 1951, 167 1030, ref. Chem. Abstr. 1951, 45 9623: grosse Mengen in Algen, anscheinend in freiem Zustand.
C. Scheibler, B. 1869, 2, 296: aus Melasse der Rübenzuckerfabrikation wurde sekundär das wohl nächst höhere Homologe der Asparaginsäure erhalten; dies deutet auf das prim. Vorhandensein von Glutamin (s. E. Schulze u. E. Boss-Hard, B. 1885, 18 390).
E. Schulze u. A. Urich, B. 1877, 10 85: indirekter Nachweis im Saft der Runkélrübe.
E. Schulze u. J. Barbieri, B. 1877, 10 199: indirekter Nachweis in Kürbiskeimlingen.
V. Gorup-Besanez, B. 1877, 10 780: indirekter Nachweis im Saft v. Wickenkeimlingen.
E. Schulze u. E. Bosshard, B. 1883, 16 312: erstmalige Isolierung in krist. Form aus Pflanzen, u. zwar aus Runkelrübensaft; 0,7–0,9 g aus 1 l Rübensaft isoliert.
H. Schiff, A. 1900, 310 25 resp. 42: Konst.
H. Thierfelder, Z. physiol. Ch. 1921, 114 192: Beweis für Konst.
M. Bergmann, L. Zervas u. L. Salzmann, B. 1933, 66 1288: Synthese.
E. Emiliani, ref. C. 1939, I, 3275: 3–4 g aus 1 l Zuckerrübensaft.
F. C. Steward u. H. E. Street, ref: Chem. Abstr. 1946, 40 4413: 1,51 g aus 1 kg frischen Kartoffeln.
H. P. Dupuy u. J. G. Lee, J. Am. Pharm. Ass. 1954, 43, 61: zu ca. 0,25% aus den Samen v. Lathyrus pusillus.
E. D. Schilling u. F.M. Strong, Am. Soc. 1954, 76 2848; 1955, 77, 2843: Isolierung aus den Samen v. Lathyrus odoratus; Brutto- u. Konst.-Formel; Synthese.
G. F. Mc Kay, J. J. Lalich, E.D. Schilling u. F.M. Strong, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 1842: aus 28 kg Mehl der Bohnen v. Lath yrus odoratus wurden 28,3 g des Lathyrus-Faktors isoliert.
H. D. Dakin, Biochem. J. 1918, 12, 290 resp. 303: erstmals bei der Hydrolyse v. Caseinogen erhalten; Konstitution.
H. D. Dakin, Biochem. J. 1919, 13 398:’ Synthese der inaktiven Säure; über optische Aktivität der natürl. Säure.
D.B. Jones u. C. O. Johns, J. Biol. Chem. 1919, 40 435: zu 2,81% aus dem Globulin Stizolobin aus der chines. Samtbohne = Stizolobium niveum.
H. D. Dakin, Z. physiol. Ch. 1923, 130 159: zu 2,5% aus Zein (aus Mais).
D.B. Jones u. R. Wilson, ref. C. 1929, I, 1401: zu 7,7% aus Gliadin (aus Weizen). A. Lendle u. W. Hansel, Arch. Pharm. 1938, 45: 0,2 g der freien Säure aus 10 kg Kürbis-Samen.
C. E. Dent u. D. J. Fowler, Biochem. J. 1954, 56 54: Dakin’S Oxyglutaminsäure soll ein Gemisch versch., gewöhnlicher Aminosäuren sein.
A. I. Virtanen u. P. K. Hietala, Acta Chem. Scand. 1955, 9 175: in den grünen Teilen v. Phlox decussata u. zwar 750 mg aus 3,5 kg frischen Pflanzen; wurde auch in der Protein-Fraktion aus Phlox gefunden u. in Linaria vulgaris nachgewiesen.
A. I. Virtanen u. A.-M. Berg, Acta Chem. Scand. 1955, 9 553: Vorkommen in Phyllitis scolopendrium.
N. Grobbelaar, J. K. Pollard U. F. C. Steward, Nature 1955, 175 703: aus dem Farn Adiantum pedatum isoliert; Synthese.
A. I. Virtanen u. A.M.Berg, Acta Chem. Scand. 1955, 9 553: im Farn Phyllitis scolopendrium nachgewiesen.
B. Bramesfeld u. A.I. Virtanen, Acta Chem. Scand. 1956, 10 688: in Asplenium septentrionale an Stelle von y-Oxy-a-aminopimelinsäure (s. Nr. 2381) gefunden.
J. Done u. L. Fowden, Biochem. J. 1952, 51 451: aus jungen Pflanzen der Erdnuss = Arachis hypogaea; vermutliche Konst.
R. M. Zacharius, J. K. Pollard u. F. C. Steward, Am. Soc. 1954, 76, 1961: geringe Mengen in der Zwiebel der Tulpe = Tulipa gesneriana nachgewiesen.
G. Harris, Chem. and Ind. 1954, 240: im Hopfen nachgewiesen.
L. Fownerr, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 5591: ist im Samenprotein der Erdnuss nicht enthalten, sondern entsteht erst in der Keimlingspflanze.
P. C. Wailes u. M. C. Whiting, Soc. 1955, 3636: Bestätigung der Konst. durch Synthese der racem. Verbindung.
H. Hellmann u. F. Lingens, B. 1956, 89, 77: Synthese.
J. Done u. L. Fowden, Biochem. J. 1952, 51 451: aus jungen Pflanzen der Erdnuss = Arachis hypogaea; vermutliche Konst.
R. M. Zacharius, J. K. Pollard u. F. C. Steward, Am. Soc. 1954, 76 1961: geringe Mengen aus der Zwiebel der Tulpe = Tulipa gesneriana isoliert.
G. Harris, Chem. and Ind. 1954, 240: im Hopfen nachgewiesen.
L. Fowden, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 5591: ist im Samenprotein der Erdnuss nicht enthalten, sondern entsteht erst in der Keimlingspflanze.
P. C. Wailes u. M. C. Whiting, Soc. 1955, 3636: Bestätigung der Konst. durch Synthese der racem. Verbindung.
T. G. Hyde, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 7245: kleine Mengen in Samen u. Schoten der Erbse.
S. P. L. Sörensen, ref. C. 1903, II, 33: Synthese.
H. K. Mitchell u. M. B. Houlahan, J. Biol. Chem. 1948, 174 883; E. Windsor, J. Biol. Chem. 1951, 192 607: Vorläufer bei der Lysin-Synthese durch Neurospora crassa.
E. Windsor, J. Biol. Chem. 1951, 192 595: zu 0,06% in Maiskörnern, z. T. frei, z. T. als Protein-Bestandteil, frei im Extrakt aus Aspergillus oryzae.
A.-M. Berg, S. Kari, M. Alfthan u. A. L Virtanen, Acta Chem. Scand. 1954, 8 358, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 10842: in 9 verschiedenen Pflanzen - Blättern, Samen u. Keimlingen - papierchromatographisch nachgewiesen.
P. Boulanger u. R. Osteux, C. r. 1954, 239 458: in keimenden Bohnen.
A. I. Virtanen u. A.-M. Berg, Acta Chem. Scand. 1954, 8 1085: in Asplenium septentrionale nachgewiesen; Synthese.
A.-M. Berg U. A. I. Virtanen, Acta Chem. Scand. 1954, 8 1725: 2 mg aus 280 g der frischen Pflanze Asplenium septentrionale isoliert u. in den Samen v. Ceratonia siliqua nachgewiesen.
A. I. Virtanen, E. Uksila u. E. J. Matikkala, Acta Chem. Scand. 1954, 8 1091: in freier Form im Farn Asplenium septentrionale nachgewiesen; kommt vermutlich auch in anderen Asplenium-Arten vor.
A. I. Virtanen, E. Uksila u. E. J. Matikkala, Acta Chem. Scand. 1954, 8 1091: aus dem Farn Asplenium septentrionale isoliert; kommt vermutlich auch in anderen Asplenium-Arten vor.
E. Klebs, B. 1893, 26 2264; Z. physiol. Ch. 1894, 19 301 resp. 309: Synthese der opt. inaktiven Verb.
C. Neuberg u. E. Ascher, Biochem. Z. 1906, 1 380: Spaltung der DL-Verb. TH. H. Haskell, S. A. Fusari, R..P. Frohardt U. Q. R. Bartz, Am. Soc. 1952, 74, 599: aus dem von 2 Streptomyces-Arten produzierten Antibioticum Viomycin, nachdem es schon von H. E. Carter et al. aus dem Antibioticum Streptothricin erhalten worden war.
E. Fischer, B. 1901, 34, 2900: Synthese.
J. R. Catch u. T. S. G. Jones, Proc. Biochem. Soc. 1948, Lii: DL-Verb. aus dem Säurehydrolysat des Antibioticums Aerosporin isoliert.
T. S. G. Jones, ref. Chem. Abstr. 1949, 43 8445: Bestandteil der Antibiotica Polymyxin A, B, C u. D.
J. R. Catch, T. S. G. Jones U. S. Wilkinson, ref. Chem. Abstr. 1949, 43 9386: aus dem Hydrolysat v. Polymyxin A wurde die L- u. die DL-Verb. gewonnen.
D. H. Peterson u. L. M. Reineke, J. Biol. Chem. 1949, 181 95: das Antibioticum Circulin besteht zu ca. 57% aus L-a y-Diaminobuttersäure.
W. Hausmann u. L. C. Craig, Am. Soc. 1954, 76 4892: unter den im Antibioticum Polymyxin BI festgestellten 10 Aminosäuremolekülen finden sich 1 Mol D- u. 5 Mol L-a y-Diaminobuttersäure.
W. G. C. Forsyth, Biochem. J. 1955, 59 500: im Hydrolysat des Antibioticums Comirin.
E. Drechsel, J. pr. Chem. 1889, 39 425, ref. B. 1889, 22, Ref. 506: erstmals aus Casein erhalten.
E. Drechsel U. T. R. KRÜGer, B. 1892, 25 2454: Name; Bruttoformel; zur Konst.
A. Ellinger, B. 1899, 32 3542: Konst.
E. Fischer u. F. Weigert, B. 1902, 35 3772: Synthese der opt. inaktiven Verb.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1899, 28 465; 1900, 30 241: in Keimlingen von Lupinus luteus, L. albus, Vicia sativa u. Pisum sativum.
E. Schulze, ref. C. 1904, I, 526: in Kartoffelknollen.
E. Schulze u. E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1910, 65 431: in reifenden Samen von Pisum sativum.
K. Yoshimura, ref. C. 1910, I, 1534: 0,2 g freies Lysin aus 50 kg frischem Kohl.
H. B. Vickery, J. Biol. Chem. 1924, 61 117: geringe Mengen der freien Säure im Luzerne-PreBsaft.
C. P. Berg, J. Biol. Chem. 1936, 115 9: Spaltung von DL-Lysin.
D. B. Jones u. C. O. Johns, J. Biol. Chem. 1919, 40 435: zu 8,51% aus Stizolobin = Globulin der chines. Samtbohne = Stizolobium niveum.
C. O. Johns u. H. C. Waterman, J. Biol. Chem. 1920, 44, 303: zu 9,29% aus dem ß-Globulin der Mungobohne = Phaseolus aureus Roxb.
D. B. Jones u. H. C. Waterman, J. Biol. Chem. 1921, 46 459: zu 9,06% aus dem Glycinin der Sojabohne.
A. C. Chibnall, J. Biol. Chem. 1924, 61 303: aus dem Spinacin = Eiweissfraktion aus Spinatblättern.
D. B. Jones, C. E. F. Gersdorff u. O. Moeller, J. Biol. Chem. 1925, 64 655: zu ca. 7% aus dem Albumin der inneren, hellgefärbten Rindenteile der Akazie Robinia pseudacacia.
R. E. Coghill, J. Biol. Chem. 1926, 70 449: zu 7–7,5% im Eiweiss der Tuberkelbazillen.
A. N. Beloserski U. J. J. Dubrowskaja, ref. C. 1937, I, 3658: zu 9,44% aus dem Globulin « Hypocastanin s aus Rosskastanien-Cotyledonen.
J. C. Lewis u. N. S. Snell, Am. Soc. 1951, 73 4812: zu 12,3% im Antibioticum Subtilin.
S. B. Schryver, H. W. Buston u. D. H. Mukherjee, ref. C. 1925, II, 402: als Hydrolyseprodukt aus Fischleim u. 3 pflanzl. Eiweißstoffen erhalten; zur Konst.
D. D. Van Slyke, A. Hiller, D. A. Mac Fadyen, A. H. Hastings u. F. W. Klemperer, J. Biol. Chem. 1940, 133 287: zur Konst.
D. D. Van Slyke, A. Hiller u. D. A. Mac Fadyen, J. Biol. Chem. 1941, 141 681: geringe Mengen im Globulin der Wassermelonen- u. Baumwollsamen, im Zein, Gli~din, Arachin u. Aleuronat.
P. Desnuelle u. S. Antonin, Biochim. Biophys. Acta 1947, 1 50, ref. Chem. Abstr. 1947, 41 4529: im Haferprotein.
E. Work, Biochim. Biophys. Acta 1949, 3, 400, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 3559: im alkohol. Auszug v. Corynebacterium nachgewiesen.
J. C. Sheehan u. W. A. Bolhofer, Am. Soc. 1950, 72 2469: Konst.
J. C. Sheehan H. W. A. Bolhofer, Am. Soc. 1950, 72 2472: Synthese der DL-Verb.
L. W. Inskip, Am. Soc. 1951, 73, 5463: zum Vorkommen von Oxylysin.
G. A. Snow, Soc. 1954, 2588: als Abbauprodukt von Mycobactin (aus Mycobacterium phlei) erhalten.
S. P. L. Sörensen, Z. physiol. Ch. 1905, 44 448; S. P. L. SÖRensen u. A. C. Andersen, Z. physiol. Ch. 1908, 56 250: synthet. Darstellung.
E. Work, Proc. Biochem. Soc.1950, V; Nature 1950, 165 74, ref. Chem. Abstr. 1950, 44 7360: aus dem Hydrolysat v. Corynebacterium diphtheriae zu 4–8% der Totalproteine.
J. Asselineau, N. Choucroun u. E. Lederer, Biochim. Biophys. Acta 1950, 5, 197, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 8415: aus Mycobacterium tuberculosis var. hominis.
TH. Gendre H. E. Lederer, Biochim. Biophys. Acta 1952, 8 49, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 5659: aus menschl., avirulenten u. Rinder-Tuberkelstämmen 2u 0,2–0,7% des Bakterien-Trockengewichtes.
E. Work u. R. F. Denman, Biochem. Biophys. Acta 1953, 10 183, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 4426: aus einer Lysin erfordernden Mutante v. Escherichia coli.
R. L.M. Synge, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 3463: aus versch. weiteren Mikroorganismen.
T. Fujiwara u. S. Akabori, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 3325: im Hydrolysat aus der Alge Chlorella ellipsoidea nachgewiesen.
M. IkawA u. J. S. O’Barr, J. Biol. Chem. 1955, 213 877: zu 1% aus Lactobacillus plantarum (primär in Protein gebunden).
M. Jaffe, B. 1877, 10 1925: aus Ornithursäure erhalten durch Abspaltung der Benzoesäure; Bruttoformel; ist eine Diaminovaleriansäure.
M. Jaffe, B. 1878, 11 406: Name.
E. Schulze u. E. Winterstein, B. 1897, 30 2879: als Spaltprodukt aus Arginin erhalten; Konst.
H. B. Vickery u. C.A. Coox, J. Biol. Chem. 1931, 94 393: Darst. von kristallinem Ornithin.
A.H. Gordon, A. J. Martin u. R.L.M. Synge, Biochem. J. 1943, 37, 313: LOrnithin ist Bestandteil des Antibioticums Tyrocidin.
R. L. M. Synge, Biochem. J. 1945, 39 363: L-Ornithin Bestandteil des Antibioticums Gramicidin S.
M. W. Philpott, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 9292: im Proteinhydrolysat von Latex. J. K. Miettinen u. A. I. Virtanen, ref. Chem. Abstr. 1953, 47 5496: frei in Wurzeln v. Alnus glutinosa = Schwarzerle.
R. Gaudry, ref. Chem. Abstr. 1953. 47, 2127; 1954, 48 11333: Synthese der DL-Verb.
L. C. Craig, W. Hausmann U. J. R. W,Eisiger, J. Biol. Chem. 1952, 199 865: zu 6,5% im Antibioticum Bacitracin A.
A. I. Virtanen u. P. Link, Acta Chem. Scand. 1955, 9 531: frei u. gebunden inAsplenium nidus.
M. G. Brazhnikova, N. N. Lomakina u. L. J. Murav’Eva, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 5573: Bestandteil des Antibioticums Albomycin.
T. Gendre u. E. Lederer, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 7645: wurde als hauptsächlichste N-haltige Subst. in den Phosphatiden mehrerer Kulturen v. Mycobakterien gefunden.
D. G. Smith u. E. G. Young, J. Biol. Chem. 1955, 217 845: in der Rotalge Chondrus crispus.
R. H. F. Manske, ref. C. 1937, I, 3658: zu 10% aus der lufttrockenen Pfahlwurzel v. Corydalis ochotensis Turcz.; Konst.
R. H. F. Manske, ref. C. 1940, I, 3521: aus Corydalis cornuta Royle u. C. sibirica. R. H. F. Manske, ref. Chem. Abstr. 1946, 40 5878: 6 g aus 11,7 kg der ganzen Pflanze von Corydalis cornuta Royle.
A. I. Virtanen u. P. Linko, Acta Chem. Scand. 1955, 9 531: Vorkommen in Asplenium nidus, A. septentrionale, A. viviparum, A. trichomanes u. Corydalis bulbosa.
M. Wada, ref. C. 1930, II, 254: 3,4 g aus 80 l Preßsaft der Wassermelone; Name; Konst.; Synthese.
R.Duschinsky, C. r. 1938, 207 735: Feststellung der opt. Aktivität u. Synthese des (-l-)-Citrullins.
W. R. Fearon, Biochem. J. 1939, 33, 902: Nachweis in Edestin, Gluten, Mucin.
W. J. Wingo u. O. L. DAvis, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 3051: in Amandin, Arachin, Myosin u. den krist. Globulinen der Kürbis- u. Wassermelonen-Samen scheint gar kein - od. höchstens Spuren - Citrullin vorzukommen.
L. Fowden, Nature 1951, 167 1030: im Hydrolysat von Chlorella-Arten.
J. K. Miettinen U. A. I. Virtanen, ref. Chem. Abstr. 1953, 47 5496; Nature
170 283: frei in Blättern - besonders im Herbst, nämlich 1–2% - u. in Wurzeln v. Alnus incana u. A. glutinosa.
A. I. Virtanen u. S. Kari, Acta Chem. Scand. 1955, 9, 1548: frei in den Pollen der Birke (= Betula).
H. Borriss u. G. Schneider, Naturw. 1955, 42 103: frei in den Samen v. Agrostemma githago = Kornrade.
D. G. Smith u. E. G. Young, J. Biol. Chem. 1955, 217 845: in der Rotalge Chondrus cris pus.
E. Schulze u. E. Steiger, B. 1886, 19 1177: zu 3–4% aus lufttrockenen, etiolierten Keimlingen v. Lupinus luteus; Name; Bruttoformel.
E. Schulze u. A. Likiernik, B. 1891, 24, 2701: zur Konst.
E. Schulze, B. 1896, 29 352: in geringer Menge in den Knollen u. Wurzeln versch. Pflanzen (z. B. Steckrübe u. Topinambur).
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1896, 22, 435: reichliche Mengen aus den Keimpflanzen der Fichte = Picea excelsa der Weisstanne = Abies pectinata u. der Kiefer = Pinus silvestris.
E.O. V. Lippmann, B. 1896, 29 2645: im Saft der Zuckerrübe.
E. Schulze u. E. Winterstein, B. 1897, 30 2879: Konst.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1898, 24, 276 u. 25 360: zu ca. 10% in den Proteinen der Coniferensamen.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1900, 30 241: in Keimlingen von Lupine-Arten, Vicia sativa u. Pisum sativum.
E. Schulze u. E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1901, 33 547: zu 8,3–11,3% in Coniferensamen, zu 7,6% in Kürbissamen, zu ca. 6,5% in Samen versch. Lupine-Arten, zu 4,6% aus dem Legumin der Erbse, zu 11,0% aus dem Edestin.
E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1905, 45 69: im Eiweiss von Ricinussamen bis 16,6%.
T. B. Osborne u. S. H. Clapp, ref. C. 1907, II, 1799: zu 16,0% aus dem Excelsin der Paranuss = Bertholletia excelsa.
S. P. L. Sörensen, B. 1910, 43 643: Synthese der DL-Verb.
C.O. Johns, A. J. Finks u. C. E. F. Gersdorff, J. Biol. Chem. 1919, 37; 149: zu 15,92% aus Kokosnuss-Globulin.
R. E. Coghill, J. Biol. Chem. 1926, 70 439 u. 449: aus Eiweiss-Fraktionen der Tuberkelbazillen bis zu 22,2%.
H. B. Vickery, J. Biol. Chem. 1940, 132 325: zu 16,76% im Edestin, zu 16,04% im Samenglobulin des Tabaks.
C. A. Knight, Am. Soc. 1942, 64 2734: in versch. Stämmen von Tabak- u. Gurken-Mosaikvirus wurden nach Hydrolyse 8,7–10% gefunden.
E. L. Smith u. R. D. Greene, J. Biol. Chem. 1947, 167 833: zu 15,8–17,9% in den Samenglobulinen versch. Cucurbitaceen, zu 16,7% im Hanf-Edestin.
K. Saito u. Y. Nakamura, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 7713: einzige Aminosäure, die bei der Hydrolyse von Sargalin - aus der Meeresalge Sargassum confusum -entsteht.
R. BarrÉ, Bull. Soc. Chim. biol. 1953, 35 907, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 5891: zu 9,7–10,8% in den Proteinen der Mandel.
D. G. Smith u. E. G. Young, J. Biol. Chem. 1955, 217 845: hoher Arginin-Gehalt in der Rotalge Chondrus crispus.
M. Kitagawa u. T. Tomita, ref. C. 1930, I, 696; M. Kitagawa u. T. Tomiyama, ref. C. 1930, I, 1316: Isolierung aus der Jackbohne = Samen von Canavalia ensi f ormis L.; Bruttoformel.
M. Kitagawa u. H. Yamada, ref. C. 1933, I, 2559: Ausbeute aus fettfreiem Jackbohnenmehl 2,8%; Name; zur Konst.: wird fermentativ in Harnstoff + Canalin (C4HIO03N2) gespalten.
M. Kitagawa u. S. Monobe, ref. C. 1934, I, 3349: Konst. des Spaltprod. Canalin.
J. M. Gulland u. C. J. O. R. Morris, Soc. 1935, 763: Konst.
M. Kitagawa U. A. Takani, ref. C. 1936, II, 1183: Teilsynthese.
M. Kitagawa, ref. C. 1937, I, 62 u. 896: Synthese des Canalins.
M. Damodaran u. K. G. A. Narayanan, Biochem. J. 1939, 33 1740: zu 2% aus entfetteten Samen v. Canavalia obtusifolia.
E. Müller u. K. Armbrust, Z. physiol. Ch. 1940, 263 41: Vorkommen in Sojabohnen wahrscheinlich.
W. R. Fearon u. E. A. Bell, Biochem. J. 1955, 59, 221: aus 113 g Samen v. Colutea arborescens wurden 1,2 g isoliert (nachgewiesen 4,7%, in Jackbohnen 3,3%, in Sojabohnen 0%).
M. Kitagawa u. J. Tsukamoto, ref. C. 1938, I, 3639: aus Canavanin dargestellt. D. Ackermann U. W. Appel, Z. physiol. Ch. 1939, 262 103: aus Samen der Jackbohne isoliert (ist aber vielleicht sekundär aus Canavanin entstanden).
D. W. Woolley, R. B. Pringle u. A. C. Braun, J. Biol. Chem. 1952, 197 409: Isolierung aus Pseudomonas tabaci; ist eine α-Aminosäure.
D. W. Woolley, G. Schaffner u. A. C. Braun, J. Biol. Chem. 1952, 198 807: zu 55% aus einem Hydrolysat des Toxins aus Pseudomonas tabaci; Name; Brutto- u Konst -Formel.
D. W. Woolley, G. Schaffner U. A. C. Braun, J. Biol. Chem. 1955, 215 485: das dem Tabtoxinin zugrunde liegende, phytopathogene Toxin ist vermutlich das Lacton von a-Lactyltabtoxinin u. hat folg. Konst.:.
S. A. Fusari, R. P. Frohardt, A. Ryder, TH. H. Haskell, C. C. Elder U. Q. R. Bartz, Nature 1954, 173, 72; Am. 2881: aus Kulturfiltrat einer Streptomyces-Art; Name Formel.
J. A. Moore, J. R. Dice, E. D. Nicolaides, R. D. Westland Soc. 1954, 76 2884: Synthese.
D. A. Clarke, H. C. Reilly, C. C. Stock, A. M. Moore, J. Ehrlich, H. W. Dion, H. M. Crooks, R. E. Maxwell, M. S. Morgan, A. G. Renfrew et al., ref. Angew. Ch. 1956, 309: aus einem Streptomyces-Stamm isoliert; Konst.; Synthese; soll krebshemmend wirken.
F. E. King, T. J. King u. A. J. Warwick, Soc. 1950, 3590: zu 0,6% aus dem Holz v. Baikiaea plurijuga; Name; Brutto- u. Konst.-Formel; Synthese.
F.E. King u. T. J. King, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 4534: Isolierung aus obigem Holz. N. Grobbelaar, J. K. Pollard u. F. C. Steward, Nature 1955, 175 703: imPericarp der Datteln nachgewiesen.
H. Ost, J. pr. Chem. 1883, [2] 27 257, ref. B. 1883, 16 1373 resp. 1375: synthet. erhalten, aber wohl nicht ganz rein.
A. Ladenburg, B. 1891, 24 640: Synthese; Name Pipecolinsäure.
F. Mende, B. 1896, 29 2887: Spaltung der synthet. DL-Verb.
W. Leithe, B. 1932, 65 927: Angaben über opt. Drehung.
R. J. Morrison, Biochem. J. 1953, 53, 474: aus 500 g trockenen Blättern des Weissklees = Trifolium repens wurden 0,51 g der L-Verb. erhalten; chromatographisch noch in weiteren Pflanzen nachgewiesen: Trifolium pratense, Laburnum vulgare, Pisum sativum Lathyrus, Allium ursinum jungen Äpfeln.
R. M. Zacharius, J. F. Thompson u. F. C. Steward, Am. Soc. 1952, 74 2949: 0,8 g der L-Verb. aus 10 kg frischen, grünen Bohnen von Phaseolus vulgaris.
P. H. Lowy, Arch. Biochem. Biophys. 1953, 47, 228, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 2186: Entstehung in den Blättern aus Lysin.
J. Kolousek, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 3633: in Galega of ficinalis nachgewiesen. R. M. Zacharius, J. F. Thompson u. F. C. Stewart, Am. Soc. 1954, 76 2908: Angaben über Vorkommen in 17 Pflanzenarten, u. zwar in Früchten, Blättern, Knollen usw.
N. Grobbelaar, R.M. Zacharius u. F.C. Stewart, Am. Soc. 1954, 76 2912: zu ca. 0,02% aus grünen Bohnen von Phaseolus vulgaris.
G. Harris, Chem. and Ind. 1954, 240: im Hopfen nachgewiesen.
A. I. Virtanen u. S. Karl, Acta Chem. Scand. 1955, 9 1548: in den Pollen windblutiger Pflanzen (Betula, Corylus, Populus usw.).
A. I. Virtanen u. S. Kari, Acta Chem. Scand. 1955, 9 170: 180 mg aus 655 g frischer Acacia pentadenia auch in Acacia retinodes, Strelitzia reginae u. Albizzia lophantha enthalten.
A. I. Virtanen u. S. Kari, Acta Chem. Scand. 1954, 8 1290, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 3319: aus Rhapis flabelliformis isoliert u. in Acacia-Arten nachgewiesen.
A. I. Virtanen u. S. Kart, Acta Chem. Scand. 1955, 9 170: aus Acacia pentadenia, A. retinodes u. Strelitzia reginae.
N. Grobbelaar, J. K. Pollard u. F. C. Steward, Nature 1955, 175 703: im Pericarp der Datteln nachgewiesen.
R. WillstÄTter, B. 1900, 33, 1160: Synthese der opt. inaktiven Verb.
E. Fischer, Z. physiol. Ch. 1901, 33 151: als Spaltprodukt aus Casein erhalten u. als (—)-α-Pyrrolidincarbonsäure erkannt.
E. Fischer u. U. Suzuki, B. 1904, 37, 2842: Name Prolin.
E. Schulze u. E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1905, 45 38: aus Keimlingen v. Lupinus albus isoliert.
E. Fischer u. G. ZemplÉN, B. 1909, 42 2989: Spaltung der synthet. DL-Verb. R. J. Anderson u. W. L. Kult, J. Biol. Chem. 1922, 50 433: frei zu 0,60% im Maispollen.
K. V. Giri, K. S. Gopalkrishnan, A. N. Radhakrishnan u. C. S. Vaidyanathan, Nature 1952, 170 579, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 2288: relativ viel freies Prolin in Blättern von Citrus-Arten u. anderen Rutaceen.
H. Fukusava, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 6515: frei in reichlicher Menge in den reifen Antheren von Weizen u. Mais.
H. S. Mc Kee u. G. Urbach, Nature 1955, 175 470, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 13380: Blätter v. Santalum obtusifolium u. S. murrayanum enthalten «viel» Prolin.
A. I. Virtanen u. S. Karl, Acta Chem. Scand. 1955, 9 1548: freies Prolin in den Pollen windblutiger Pflanzen (Betula, Corylus, Populus usw.).
T. Shibamoto, R. Shoji u. K. Tagawa, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 16996: frei in den Schösslingen v. Phyllostachys edulis.
T. B. Osborne u. S. H. Clapp, ref. C. 1907, II, 1799: zu 13,7% aus Hordenin der Gerste.
T. B.Osborne u. S. H. Clapp, ref. C. 1908, I, 1189: zu 9,82% aus Gliadin des Roggenmehls.
T.B. Osborne u. L.M.Liddle, ref. C. 1910, II, 839: zu 9,0% aus Zein des Mais.
T.B. Osborne u. H.H. Guest, J. Biol. Chem. 1911, 9 425: zu 13,22% aus Weizengliadin.
D. B. Jones u. C.O. Johns, J. Biol. Chem..1920, 44, 283: zu 5,54% in Kokosnussglobulin.
E. Fischer, B. 1902, 35, 2660: erstmalige Isolierung aus Gelatine-Eiweiss; als eine Oxypyrrolidin-a-carbonsäure erkannt.
E. Abderhalden, Z. physiol. Ch. 1903, 37, 499: zu 2% aus Hanf-Edestin. H. Leuchs, B. 1905, 38 1937: Synthese der opt. inaktiven Verb.
H. Leuchs u. H. Felser, B. 1908, 41, 1726: zur Konst.
H. Leuchs u. J. F. Brewster, B. 1913, 46 986: Konst. u. Synthese des (-)Oxyprolins.
O. Fürth u. H. Minnibeck, Biochem. Z. 1932, 250 18: zu 0,8% im Zein des Mais. E. Work, Biochim. Biophys. Acta 1949, 3 400, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 3559: aus dem Hydrolysat der Zellen v. Corynebacterium diphtheriae.
J.L. Van Eijk, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 9262: im Saft des Krautes von Erodium cicutarium.
K. V. Giri, K. S. Gopalkrishnan, A. N. Radhakrishnan u. C. S. Vaidyanathan, Nature 1952, 170 579, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 2288: «ungewöhnlich viel» freies Oxyprolin in Blättern v. Santalum album.
A. I. Virtanen u. S. Karl, Acta Chem. Scand. 1955, 9 1548: freies Oxyprolin in den Pollen windblutiger Pflanzen (Betula, Corylus, Populus usw.).
H. Leuchs, B. 1905, 38 1937: Synthese der opt. inaktiven Form.
H. Leuchs u. J. F. Brewster, B. 1913, 46 986; H. Leuchs u. K. Bormann, B. 1919, 52, 2086: Synthese der opt. aktiven b-Form des Oxyprolins.
H. Wieland u. B. Witkop, A. 1940, 543 171; H. Wieland u. G. Schmidt, A. 1952, 577, 215: aus dem Peptid «Phalloidins (s. Nr. 2440) isoliert.
A. N. Radhakrishnan u. K. V. Girl, Biochem. J. 1954, 58 57: aus Blättern v. Santalum album.
J. A. Godson u. H. W. B. Clewer, Soc. 1919, 115 923: zu 0,2–0,4% aus der Rinde v. Croton gubouga.
G. Urbach, Nature 1955, 175 170: aus ca. 400 kg Reisigholz des Apfelbaumes wurden 80 mg einer neuen Aminosäure isoliert; es kommt ihr vermutlich obige Konst. zu.
A. C. Hulme u. F. C. Steward, Nature 1955, 175 171: die von H. S. Mc Kee 1954 aus Zweigen des Apfelbaumes und die von A. C. HuLme (Nature 1954, 174 1055) aus Apfelschalen isolierten Substanzen sind mit dem von G. Urbach isolierten 4-Oxymethylprolin identisch.
H. Schwanert, A. 1860, 116 257 resp. 272: Synthese der Carbopyrrolsäure.
H. W Eidel u. G. L. Ciamician, M. 1880, 1, 279 resp. 292; G. L. Ciamician, M. 1880, 1 625: Konst. der Carbopyrrolsäure V. Schwanert: α-Carbopyrrolsäure.
T. Minagawa, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 3102: Hydrolyseprodukt aus dem Aglykon der aus Hefe dargestellten Invertase; Name Minalin.
T. Minagawa, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 151, 152: Hydrolyseprodukt aus dem Aglykon der aus Penicillium u. Aspergillus isolierten Pectase; Name; Konst.
R. Neumeister, Ztschr. f. Biologie 1890, 26 329, Anm.: Name Tryptophan für ein Eiweiss-Spaltprodukt, das allerdings schon viel früher (seit 1831) festgestellt worden war.
F. G. Hopkins u. S. W. Cole, J. of. Physiol. 1901, 27 418: erstmalige Isolierung der reinen Verb. aus Casein-Hydrolysat; Bruttoformel.
F. G. Hopkins u. S. W. Cole, ref. C. 1903, II, 1011: zur Konst.
A. Ellinger, B. 1904, 37, 1801; 1905, 38 2884: zur Konst.
E. Schulze u. E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1905, 45 38: in etiolierten Keimlingen von Lupinus albus u. vermutlich in denen von Vicia sativa.
A. Ellinger u. C. Flamand, B. 1907, 40 3029: Konst.; Synthese der opt. inaktiven Verb.
E. Schulze u. E. Winterstein, Z. physiol. Ch. 1910, 65 431: aus Samenhülsen v. Pisum sativum isoliert u. in denen von Phaseolus vulgaris nachgewiesen.
P. Thomas, ref. C. 1921, I, 576: zu 2,28% aus einer Hefeeiweiss-Fraktion.
F. Kretz, Biochem. Z. 1922, 130 86: Vorkommen u. Lokalisation in der Pflanze.
D.B. Jones u. C. E. F. Gersdorff, J. Biol. Chem. 1923, 56 79: zu 2,63% aus dem Globulin der Samen v. Cucumis melo u. zu 3,03% aus dem Globulin der hülsenhaltigen Samen.
D.B. Jones, C.E.F. Gersdorff B. O. Moeller, J. Biol. Chem. 1924, 62 183: zu 4,8% aus Weizenkleie.
D.B. Jones, C.E.F. Gersdorff u. O. Moeller, J. Biol. Chem. 1925, 64 655: zu 4,18% aus dem Albumin der inneren, hellgefärbten Rindenteile der Akazie = Robinia pseudacacia.
E. Komm, Z. physiol. Ch. 1926, 156 202: zu 5,3% aus einem krist. Eiweiss aus dem Milchsaft v. Antiaris toxicaria.
D. B. Jones u. C. E. F. Gersdorff, J. Biol. Chem. 1927, 75, 213: zu ca. 2,7% aus den Globulinen der Samen v. Sesamum indicum.
W. J. Boyd, Biochem. J. 1929, 23, 78: zu 3,5% aus Edestin.
F.A. Csonka, J. Biol. Chem. 1935, 109 703: zu 2–3% aus Hefe-Proteinen.
A. N. Beloserski u. J. J. Dubrowskaya, ref. C. 1937, I, 3658: zu 2,7% aus dem Globulin Hypocastanin aus Rosskastanien-Cotyledonen.
C. A. Knight u. W. M. Stanley, J. Biol. Chem. 1941, 141 39: in versch. Stämmen von Tabak-Mosaikvirus u. Gurken-Virus wurden nach Hydrolyse bis 4,5% resp. 1,5% gefunden.
R. D. Hotchkiss, J. Biol. Chem. 1941, 141,171; H. N. Christensen, R. R. Edwards u. H. D. Piersma, J. Biol. Chem. 1947, 141 187: das Antibioticum Gramicidin besteht zu 30–35%, Tyrocidin zu 5–6% aus L-Tryptophan.
TH. J. DE Man, Naturw. 1943, 31 492: frei zu ca. 0,02–0,04% in Lolium perenne. Y.MoulÉ, Bull. Soc. Chim. biol. 1951, 33 1461: zu 2,68% aus Ricinin.
J. C. Lewis u. N. S. Snell, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 8691: zu 5,1% im Antibioticum Subtilin.
L. E. Ericson u. B. Carlson, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7708: frei u. gebunden in Meeresalgen.
M. Takagi, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 1151: in Meeresalgen zu 0,4–8,75% der Gesamtproteine.
N. Ghatak u. R. Kaul, ref. C. 1932, II, 3730: aus Samen v. Abrus precatorius L. isoliert; Name; Bruttoformel.
T. Hoshino, A. 1935, 520 31: Konst.
W. G. Gordon u. R. W. Jackson, J. Biol. Chem. 1935, 110 151: Synthese von N-Methyltryptophan.
W.M. Cahill u. R.W. Jackson, J. Biol. Chem. 1938, 126 29: 22,7 g aus 500 g Samen v. Abrus precatorius; Konfiguration; Identität der synthet..DL-Verb, mit dem racemisierten Naturprodukt; dieses selbst ist L (+)-Abrin.
H. Wieland u. B. Witxor, A. 1940, 543, 171: Hydrolyseprodukt aus dem Peptid Phalloidin (s. Nr. 2440).
B. Witkop, A. 1947, 558 98: aus Tryptophan dargestellt.
M. Kotake, T. Sakan u. T. MIwA, Am. Soc. 1950, 72 5085: Synthese der DL-Verb.
M. Kotake, T. Sakan u. T.Miwa, B. 1952, 8.5, 690: Spaltung der synthet. DL-Verb.; die dabei erhaltene (+)-Verb. ist mit der aus Phalloidin ident.
A. Soltys u. K. Umrath, Biochem. Z. 1936, 284 247: die Erregungssubstanz der Mimosoideen ist eine Oxysäure.
J. Renz, Z. physiol. Ch. 1936, 244, 153: Isolierung der krist.Verb. aus jungen Trieben u. Blattstielen von Mimosa pudica L.; Name Mimosin; ist eine Oxyaminosäure.
M. MascrÉ, C. r. 1937, 204 890: zu 2% aus Samen v. Leucaena glauca Benth.; Name Leucaenol; optisch inaktiv (!).
H. Nienburg u. K. TaubÖCK, Z. physiol. Ch. 1937, 250 80: Bruttoformel; zur Konst. v. Mimosin.
R. Adams, ST. J. Cristol, A. A. Anderson u. A. A. Albert, Am. Soc. 1945, 67 89: zur Konst.
D. Kostermans, Rec. 1946, 65 319, ref. Chem. Abstr. 1946, 40 7193: 4 g Mimo-sin aus 100 g Samen v. Leucaena glauca; zur Kunst.
J. P. Wibaut, Heiv. 1946, 29, 1669: Kunst; die von Mascrä s. Z. isolierte Verb. war vielleicht die racem. Form.
A. F. Bickel, Am. Soc. 1947, 69 1801: Isolierung aus Blättern u. Samen v. Leucaena glauca; Bestätigung der Konst.
R. Adams u. V.V. Jones, Am. Soc. 1947, 69 1803; R. Adams, V.V. Jones u. J.L. Johnson, Am. Soc. 1947, 69 1810: Bestätigung der Konst.-Formel.
R. Adams u. J. L, Johnson, Am. Soc. 1949, 71, 705: Synthese der DL-Verb.
R. J. C. Kleipool u. J. P. Wibaut, Rec. 1950, 69 37, ref. Chem. Abstr. 1950, 44 5357: Mimosin ist ident. mit Leucaenol; Name Mimosin hat Priorität.
J. P. Wibaut u. J.P. Schuhmacher, Rec. 1952, 71, 1017, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 9967: Leucenol aus Samen v. Leucaena glauca ist links-drehend wie Mimosin.
A. R. Caraivgal Jr. u. A. D. Catindig, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 12193: Blätter Leucaena glauca (von den Philippinen) enthalten - bez. auf Trockengewicht - 4,4–7,5% Mimosin; jüngere Blätter enthalten wesentlich mehr als alte.
A. Kossel, Z. physiol. Ch. 1896, 22 176 resp. 181: entdeckt bei der Hydrolyse von Sturin = Protamin des Störspermas; Name; Bruttoformel zur Diskussion.
S. G. Hedin, Z. physiol. Ch. 1896, 22 191: aus Eiweisshydrolysaten isoliert; Bruttoformel.
E. Schulze, Z. physiol. Ch. 1899, 28 465: aus etiolierten Keimlingen v. Lupinus luteus.
N. J. Wassilief, ref. C. 1901, I, 786: aus Keimlingen v. Lupinus albus.
E Schulze, ref. C. 1904, I, 526: geringe Mengen aus Kartoffelknollen.
H. Pauly, Z. physiol. Ch. 1904, 42 508: Konst.
F. Knoop u. A. Windaus, ref. C. 1905, II, 830: Bestätigung der Konst.
K. Yoshimura, ref. C. 1910, II, 892: zu 0,014% aus dem Steinpilz = Boletus edulis.
F. L. Pyman, Soc. 1911, 99 1386: Synthese von (-)-Histidin.
E. Schulze u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1912, 81 53: frei in Topinambur u. Schwarzwurzel.
S. FRänkel u. J. Reiner, Biochem. Z. 1916, 74 167: frei in Extrakten aus Secale cornutum.
A. Kiesel, Z. physiol. Ch. v. Pinus silvestris. 1922, 120 85: frei in geringer Menge in den Pollen v. Pinus silvestris.
A. Kiesel, Z. physiol. Ch. 1924, 135 61: frei in reifenden Roggenähren nachewiesen.
E.O. v. Lippmann, B. 1924, 57 256: frei aus Laugen der Rübenzucker-Fabrikation isoliert.
M. Sumi, Biochem. Z. 1928, 195 161: frei in geringer Menge aus den Sporen von A spergillus oryzae.
T. B. Osborne, C. S. Leavenworth u. C. A. Brautlecht, Am. J. Physiol. 1908, 23 180: zu 3,46% im Globulin aus Baumwollsamen.
C. L. LautenschlÄGer, Z. physiol. Ch. 1918, 102 226: zu 2,5–4,8% aus Edestin.
C.O. Johns u. C. E. F. Gersdorff, J. Biol. Chem. 1922, 51 439: zu ca. 3,8% im ß-Globulin aus Tomatensamen.
D.B. Jones u. C.E.F. Gersdorff, J. Biol. Chem. 1923, 56 79: zu 4,22% aus dem Globulin der Samen v. Cucumis melo.
H. Lüers u. M. Landauer, Biochem. Z. 1922, 133 598: zu 4,61% aus Leucosin = Albumin aus Gerstenmehl.
R. E. Coghill, J. Biol. Chem. 1926, 70 449: zu 4,2–5,2% im Eiweiss der Tuberkelbazillen.
F.A.Csonka u. D.B. Jones, J. Biol. Chem. 1927, 73, 321: zu 3,48 resp. 3,67% im a- resp. fi-Glutelin des Weizens.
D. B. Jones u. C. E. F. Gersdorff, J. Biol. Chem. 1927, 75, 213: zu 2,68 resp. 3,45% im a- resp. f-Globulin aus Sesamsamen.
A. Kiesel u. S. KusMin, Z. physiol. Ch. 1936, 238 145: zu ca. 4% im Edestin.
A. Mazur u. H. P. Clarke, J. Biol. Chem. 1942, 143 39: zu 5% im Protein von Diatomeen.
L. C. Craig, W. Hausmann u. J. R. Weisiger, J. Biol. Chem. 1952, 199 865: zu 7,7% im Antibioticum Bacitracin A.
K. Nakanishi, T. Ito u. Y. Hirata, Am. Soc. 1954, 76 2845: bei der Hydrolyse aus dem Antibioticum Roseothricin erhalten; Name Roseonin; Konst.
H. Brockmann u. H.Musso, B. 1955, 88 648: entsteht bei der Säurehydrolyse des Antibioticums Gepmycin (aus Streptomyces xanthophaeus); Name Geamin; Konstitution; ist vermutlich mit Roseonin identisch.
E. Baumann, Z. physiol. Ch. 1884, 8 299: aus Cystin dargestellt; Name; Bruttoformel.
E. Friedmann, ref. C. 1902, II, 840, 1360; 1903, II, 1428: Konst.
A. Kozlowski, Biochem. J. 1926, 20 1346: in sehr geringer Menge aus Samen der Erbse = Pisum sativum isoliert u. in zahlreichen anderen Pflanzen nachgewiesen.
A. H. Romano u. W. J. Nickerson, J. Biol. Chem. 1954, 208 409: enzymat. Reduktion von Cystin zu Cystein in Bäckerhefe, in Candida albicans u. im Samen der Erbse nachgewiesen.
C. J. Morris u. J. F. Thompson, Am. Soc. 1956, 78 1605: frei in Wurzeln u. Blättern v. Brassica rapa.
M. C. J. Thaulow, A. 1838, 27 197: Bruttoformel für «Cystic-Oxyd» «Blasenoxyd ».
E. Friedmann, ref. C. 1902, II, 840 u. 1360: Konst.
E. Erlenmeyer, B. 1903, 36 2720: Synthese.
Y. Kotase u. F. Knoop, Z. physiol. Ch. 1911, 75, 488: zu 10,6% aus einem krist. Eiweisskörper aus dem Milchsaft v. Antiaris toxicaria.
B. Sjollema u. J. J. Rinses, Z. “physiol. Ch. 1912, 76 368: zu 4,4% im Kartoffeleiweiss.
F. A. Csonka u. D. B. Jones, J. Biol. Chem. 1929, 82, 17: zu 2,56% im RoggenGlutelin u. zu 3,10% im a-Glutelin der Gerste.
A. Mazur u. H. T. Clarke, J. Biol. Chem. 1938, 123 729: zu ca. 4% aus versch. Algen.
J. R. Spies, Am. Soc. 1941, 63 2994: zu 4,3–4,9% in einer Baumwollsamenallergen-Fraktion.
W. L. Brown, J. Biol. Chem. 1942, 142 299: zu 2,92% im Conarachin (ein Protein der Erdnuss).
A. K. Balls, W. S. Hale u. T. H. Harris, Cereal Chem. 1942, 19, 279: zu 15,2% in einem Weizen-Peptid.
Y. MoulÉ, Bull. Soc. Chim. biol. 1951, 33, 1467, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 8158: zu 3,04% im Ricin.
A. Pereira, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 1866: zu 2,83% im Weizen-Gliadin.
L. C. Craig, W. Hausmann u. J. R. Weisiger, J. Biol. Chem. 1952, 199 865: zu 7,4% im Antibioticum Bacitracin A.
L. E. Ericson u. B. Carlson, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7708: frei u. gebunden in Meeresalgen.
M. J. Horn, D. B. Jones u. S. J. Ringel, J. Biol. Chem. 1941, 138 141; bei der Hydrolyse aus Wolle erhalten; Name; Brutto- u. Konst.-Formel.
V. Du Vigneaud u. G.B. Brown, J. Biol. Chem. 1941, 138 151: Synthese.
G. B. Brown u. V. Du Vigneaud, J. Biol. Chem. 1941, 140 767: neben der bisher isolierten u. synthet. dargestellten meso-Form wurden nun auch die 3 übrigen Formen (l(+), d(-) u. dl) synthet. dargestellt.
G. Alderton u. H. L. Fevold, Am. Soc. 1951, 73, 463: bei der Hydrolyse des Antibioticums Subtilin wurden ca. 3,5% meso-Lanthionin erhalten.
N. J. Berridge, G. G. F. Newton u. E. P. Abraham, Biochem. J. 1952, 52 529: meso-Form aus dem Antibioticum Nisin.
R. G. Benedict, W. Dvonch, O. L. Shotwell, TH. G. Pridham u. L. A. Lindenfelser, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 7587: meso-Form aus dem Antibioticum Cinnamycin.
R. G. Benedict, W. Dvonch, O. L. Shotwell, TH. G. Pridham u. L. A. Lindenfelser, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 7587: aus dem Antibioticum Cinnamycin erhalten.
G. Alderton, Am. Soc. 1953, 75 2391: aus dem Antibioticum Subtilin erhalten.
G. G. F. Newton, E. P. Abraham u. N. J. Berridge, Nature 1953, 171 606: aus dem Antibioticum Nisin.
R.L.M. Synge u. J. C. Wood, Proc. Biochem. Soc. 1955, XV: eine neue Aminosäure C4H2O3NS aus Kohl isoliert.
C. J. Morris u. J.F. Thompson, Chem. and Ind. 1955, 951; Am. Soc. 1956, 78 1605: aus Wurzeln u. Blättern von Brassica rapa isoliert u. in versch. anderen Cruciferen festgestellt; Konst.; Synthese.
C. Rundqvist, 1900: aus dem Zwiebelöl des Knoblauchs = Allium sativum L. in nicht reiner Form isoliert; Name Alliin.
A. Stoll u. E. Seebeck, Helv. 1948, 31, 189; 1949, 32 197: zu 0,2% aus Knoblauchzwiebeln, ferner aus frischem Bärlauch = Allium ursinum L. isoliert; Brutto- u. Konst.-Formel; fermentativer Abbau zu Allicin (s. Nr. 2291).
A. Stoll u. E. Seebeck, Helv. 1951, 34, 481: Synthese.
J. H. Mueller, ref. C. 1922, Iii, 626; J. Biol. Chem. 1923, 56 157: bei der Hydrolyse von Casein erstmals erhalten; Bruttoformel.
S. Odake, Biochem. Z. 1925, 161 446: aus Hefeextrakt isoliert.
G. Barger u. F. P. Coyne, Biochem. J. 1928, 22 1417: Name; Konst.; Synthese.
H. D. Baernstein, J. Biol. Chem. 1932, 97 663: aus a-Globulin der Tomatensamen 3,14%, aus Teozein 3,25% u. aus Satìvin 3,93%..
A. Maiur u. H. T. Clarke, J. Biol. Chem. 1942, 143 39: aus dem ProteinHydrolysat versch. Algen.
W. H. Riesen, B. S. Schweigert u. C.A. Elvehjem, J. Biol. Chem. 1946, 165, 347: zu 2,5–4,12% aus den Proteinen versch. Getreidekörner.
G. S. Rabidean, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 9171: frei in Samen von 4 Grasarten nachgewiesen.
M. Takagi u. M. Suzuxl, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 11356: in den Hydrolysaten aus Braun- u. Rotalgen wurde kein Methionin gefunden.
J. S. Chiao u. W. H. Peterson, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 2279: zu 1% aus der Hefe Rhodotorula gracilis.
T. Shibamoto, R. Shoji u. K.Tagawa, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 16996: frei in den Schösslingen v. Phyllostachys edulis.
R. A. Mc Rorie, G. L. Sutherland, M. S. Lewis, A. D. Barton, M. R. Glazener u. W. Shive, Am. Soc. 1954, 76, 115: aus Kohl-Saft isoliert und z. B. in Form des Bromids krist. erhalten; in Petersilie, Rübe, Pfeffer, Zwiebel, Salat usw. nachgewiesen.
F. Challenger u. B. J. Hayward, Chem. and Ind. 1954, 729, ref. Chem. Abstr. 1955 49, 8807: als Salz in den Zweigspitzen v. Asparagus; wurde als Chlorid isoliert.
G. Alderton, Am. Soc. 1953, 75, 2391: zu 3,2% als Hydrolyseprodukt aus dein Antibioticum Subtilin erhalten; Bruttoformel; vermutliche Konst.
M. J.Horn u. D. B. Jones, Am. Soc. 1940, 62 234: Isolierung aus dem Protein von giftigem Weizen, u. zwar in Form eines isomorphen Gemisches mit der entsprechenden Se-Verb. (Nr. 2422); Brutto- u. Konst.-Formel.
G. B. Brown u. V. DU Vigneaud, J. Biol. Chem. 1941, 137 611: Synthese.
M. J. Horn u. D.B. Jones, J. Biol. Chem. 1941, 139 649: wieder mit der entsprechenden Se-Verb. zusammen aus Blättern von auf Se-haltigem Boden gewachsenem A stragalus pectinatus
M. J. Horn, E. M. Nelsen u. D.B. Jones, ref. C. 1936, I, 4822: eine Se-haltige Aminosäure aus dem Protein von giftigem Weizen, der auf Se-haltigem Boden gewachsen war, isoliert.
M. J. Horn u. D. B. Jones, Am. Soc. 1940, 62 234: kommt im giftigen Weizen in einem isomorphen Gemisch mit der entsprechenden S-Verb. (Nr. 2421) vor, u. zwar 2 Mol Se-Verb. -1–1 Mol S-Vbrb.; das Gemisch bildet Prismen mit F (Zers.). -= 263–265°.
M. J. Horn u. D. B. Jones, J. Biol. Chem. 1941, 139 649: s. unter Nr. 2421.
A. G. Van Veen u. A. J. Hyman, ref. C. 1934, I, 1522: aus der Djenkolbohne = Früchte v. Pithecolobium lobatum isoliert; Name.
A.G. Van Veen u. A. J.Hyman, Rec. 1935, 54 493, ref. C. 1936,. I, 573: zu 1,6% aus obigen Bohnen; Brutto- u. Konst.-Formel.
V. Du Vigneaud u. W. J. Patterson, J. Biol. Chem. 1936, 114 533; M.1). Armstrong u V. DU Vigneaud, J. Biol. Chem. 1947, 168 373: Synthese.
A. G. Van Veen u. H.E. Latuasan, ref. Chem. Abstr. 1950, 44 4548: kommt in der Djenkolbohne frei vor.
J. T. Holden u. E. E. Snell, J. Biol. Chem. 1949, 178 799: im Tlydrolysat der Zellen versch. Bakterien zu 1–2% der trockenen Zellen.
C. E. Dalgliesh u. A.R. Todd, Nature 1949, 164 830, ref. Chem. Abstr. 1950, 44 2073: aus dem Antibioticum Actinomycin B.
H. Brockmann, N. Gru0Hofer, W. Kass u. II. Kalbe, 13. 1951, 84 260: aus Actinomycin C.
F. Lipmann, R. D. Hotchkiss u. R. J. Dubos, J. Biol. Chem. 1941, 141 163; A. H. Gordon, A. J. P. Martin u. R. L. M. Synge, Biochem. J. 1943, 37, 86: im Hydrolysat des Antibioticums Gramicidin.
T. S. G. Jones, Proc. Biochem. Soc. 1948, Lii: aus dem Antibioticum Aerosporin = Polymyxin A.
D. H. Peterson u. L. M. Reinecke, J. Biol. Chem. 1949, 181 95: aus dem Anti- bioticum Circulin.
L. C. Craig, J.D. Gregory u. G. T. Barry, J. Clin. Invest. 1949, 28 1014: aus dem Antibioticum Bacitracin.
A. H. Gordon, A. J. P. Martin u. R. L. M. Synge, Biochem. J. 1943, 37 313: aus dem Antibioticum Tyrocidin.
R.L.M. Synge, Biochem. J. 1945, 39, 363: aus dem Antibioticum Gramicidin S.
L. C. Craig, W. Hausmann u. J. R. Wiesiger, J. Biol. Chem. 1952, 199 865: zu.10,8% im Antibioticum Bacitracin A.
A. R. Battersby U. L. C. Craig, Am. Soc. 1952, 74, 4019; A. Paladini U. L.C. Craig, Am. Soc. 1954, 76 688: zu 22,5% aus Tyrocidin A.
C. M. Stevens, R. P. Gigger u. S. W. Bowne Jr., J. Biol. Chem. 1955, 212, 461: aus dem Hydrolysat der Zellen v. Bacillus brevis.
C. M. Stevens, P. E. Halpern u. R. P. Gigger, J. Biol. Chem. 1951, 190 705: im Hydrolysat der Zellen v. Bacillus brevis.
A. Piutti, 1887: in Keimlingen v. Lupinus albus festgestellt.
H. Pringsheim, Z. physiol. Ch. 1910, 65 89: das von Piutti isolierte D-Asparagin ist wohl während der Isolierung aus der L-Verb. entstanden.
A. Piutti, Bull. 1923, [4] 33, 804, ref. C. 1923, Iii, 861; ref. C. 1924, I, 1941; am prim. Vorkommen der D-Verb. neben der L-Verb. wird festgehalten.
G.Ivanovicz u. V. Bruckner, Naturw. 1937, 25 250, ref. C. 1937, II, 3768: die Kapselsubstanz der Milzbrandbazillen ist ein Peptid, das nur aus DGlutaminsäure aufgebaut ist.
M. S. Dunn, M. N. Camien, S. Shankman u. H. Block, J. Biol. Chem. 1947, 168 43: das Hydrolysat der entfetteten Zellen v. Lactobac. arabinosus enthält je ca. 4% D- u. L-Glutaminsäure.
M. Bovarnick, J. Biol. Chem. 1942, 145 415: eine Poly-D-glutaminsäure aus dem Kulturfiltrat v. Bacillus subtilis isoliert.
W. E. Hanby u. H. N. Rydon, Biochem. J. 1946, 40 297: aus der Kapselsubst. v. Bacillus anthracis eine y-verkettete Poly-D-glutaminsäure isoliert.
S. G. Wale Y, Soc. 1955, 517: synthet. dargest., y-verkettete Poly-D-glutaminsäure erwies sich ident. mit der aus Bazillen isolierten.
G. G. F. Newton u. E. P. Abraham, Nature, 1955, 175 548, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 13363: aus dem Antibioticum Cephalosporin C erhalten.
G. F. Newton u. E. P. Abraham, Biochem. J. 1954, 58 103: aus dem Antibioticum Cephalosporin N erhalten.
W. Hausmann u. L. C. Craig, Am. Soc. 1954, 76 4892: im Antibioticum Polymyxin B 1 Mol D-a y-Diaminobuttersäure neben 5 Mol der L-Verb. u. anderen Aminosäuren.
SH. Otani u. Y. Saito, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 13362: Bestandteil des aus Bacillus brevis isolierten Heptapeptids Gramicidin J.
W. Heintz, A. 1870, 156 25 resp. 36: erstmals synthet. dargestellt ú. als Äthylenalanin od. 21thylenlactamidsäure beschrieben.
R. J. Williams u. E. Rohrmann, Am. Soc. 1936, 58 695: fördert das Wachstum der Hefe sehr stark.
W. L. Miller, ref. Chem. Abstr. 1937, 31 1842: im Tomatensaft.
A. I. Virtanen u. T. Laine, ref. C. 1937, II, 4055: Bildung in den Wurzelknollen der Leguminosen aus Asparaginsäure durch Knöllchenbakterien.
N. Nielsen u. V. Hartelius, Biochem. Z. 1938, 295 211: muss als ein Phytohórmon angesehen werden.
H. H. Weinstock jr., H. K. Mitchell, E. F. Pratt u. R. J. Williams, Am. Soc. 1939, 61 1421: ß-Alanin ein Baustein der Pantothensäure.
N. Nielsen u. V. Hartelius, Biochem. Z. 1941, 309 304: fl-Alanin in kl. Mengen wahrscheinlich weit verbreitet; verhältnismässig viel in Presshefe u. Sojabohnen.
F. J. Ryan, R. Ballentine, E. Stolovy, M. E.Corson u. L.K. Schneider, Am. Soc. 1945, 671857: Clostridium septicum (ein Bacterium) kann f3-Alanin synthetisieren.
N. Nielsen, V. Hartelius u. G. Johansen, ref. Chem. Abstr. 1946• 40 5803: die meisten Pflanzen sind arm an (3-Alanin (ca. 1 y pro 1 g Frischgewicht).
E. Work, Biochim. Biophys. Acta 1949, 3, 400, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 3559: im alkohol. Extrakt v. Corynebacterium diphtheriae nachgewiesen.
A.C. Hulme u. W. Arthington, Nature 1950, 165 716, ref. Chem. Abstr. 1950, 44 7388: in unreifen Äpfeln nachgewiesen.
G E. Hunt, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 9624: in Wurzeln u. Knöllchen versch. Leguminosen nachgewiesen.
L. Fowden, Nature 1951, 167 1030: wenig in freiem Zustand in der Alge Chlorella vulgaris.
F.Sorm, Z. Sormova, P. Sebestovr u. V. Matejovska, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 11315: ein tox. Protein aus Shigella dysenteriae enthält ß-Alanin.
L. E. Ericson u. B. Carlson, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 7708: frei u. gebunden in Meeresalgen.
H. S. Mc Kee, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 10855: geringe Mengen in freier Form in Äpfeln.
CH. L. Madan, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 9521: frei in Kalanchoe blossfeldiana festgestellt, u. zwar am meisten in den Wurzeln u. Blüten.
TH. H. Haskell, S. A. Fusari, R. P. Frohardt u. Q. R. Bartz, Am. Soc. 1952, 74, 599: bei der Hydrolyse des Antibioticums Viomycin wurde ein Isomeres von Lysin erhalten.
E.E. Van Tamelen u. E.E. Smissman, Am. Soc. 1952, 74 3713: aus dem Antibioticum Streptolin isoliert; Name Isolysin; ist mit dem Lysin-Isomeren aus Viomycin ident.; Konst.; Synthese.
H. E. Carter, W. R. Hearn, E. M. Lansford jr., A. C. Page jr., N. P. Salzman
D. Shapiro u. W. R. Taylor, Am. Soc. 1952, 74 3704: aus dem Antibioticum Streptothricin; Name ß-Lysin; Konst.; Synthese.
E. E. Van Tamelen u. E. E. Smissman, Am. Soc. 1953, 75 2031: Struktur u. Synthese v. Isolysin.
K. Nakanishi, T. Ito u. Y. Hirata, Am. Soc. 1954, 76 2845: aus dem Antibioticum Roseothricin.
H. Brockmann u. H.Musso, B. 1955, 88 648: Hydrolyseprodukt aus dem Antibioticum Geomycin.
C. Schotten, B. 1883, 16 643: «Piperidinsäure» durch Oxydation von Piperidin erhalten; Bruttoformel.
S. Gabriel, B. 1889, 22 3335: Synthese der y-Aminobuttersäure.
S. Gabriel, B. 1890, 23 1767 resp. 1770: «Piperidinsäure» ist y-Aminobuttersäure.
E. Work, Bull. Soc. Chim. biol. 1949, 31 138, ref. Chem. Abstr. 1949, 43, 8001: im Extrakt von Cor ynebacterium diphtheriae nach Hydrolyse nachgewiesen.
M. A. Joslyn U. W. Stepka, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 2668: in Auszügen aus Äpfeln, Aprikosen, Avocato-Birnen u. Pflaumen nachgewiesen.
F. C. Steward, J. F. Thompson u. C. E. Dent, Science 1949, 110 439: frei zu 0,054% aus frischen Kartoffeln.
R. G. Westall, Nature 1950, 165 717, ref. Chem. Abstr. 1950, 44 7388: zu 0,016% aus Beta vulgaris var. cruenta = rote Rübe isoliert.
L. J. Reed, J. Biol. Chem. 1950, 183 451: frei in der Hefe zu 1–2% bez. auf das Hefe-Trockengewicht.
F. C. Steward, J. F. Thompson, F. K. Millar, M. D. Thomas u. R. H. Hendricks, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 4796: frei in Alfalfa.
L.Ljungdahl u. E. Sandegren, ref. Chem. Abstr. 1951, 45 4877: frei in Gerste, Malz u. Bierhefe.
A. J. Woiwod u. H. Proom, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 9111: Bildung durch versch. Bakterien.
G.E. Hunt, ref. Chem. Abstr. 1951, 45 9624: in Wurzeln u. Knöllchen versch. Leguminosen nachgewiesen.
E. Marian’ u. G. Torraca, ref. Chem. Abstr. 1951, 45 10628: aus Laugen der Zuckerfabrikation.
R.L.M. Synge, Biochem. J. 1951, 48 429: zu 0,045% aus dem Pressaft v. Lolium perenne L. = Raygras.
E. A. H. Roberts u. D. J. WooD, Arch. Biochem. Biophys. 1951, 33, 299, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 2633: Nachweis im Saft der Tabakblätter.
E. A. H. Roberts u. D. J. Wood, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 5142: in frischen Teeblättern.
L. Fowden, Nature 1951, 167 1030: in den Proteinen einiger Algen gefunden.
J. L. Auclair u. J. B. Malta’S, Nature 1952, 170 1114, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 4439: aus Pisum sativum zu 1,1% bez. auf Trockengewicht.
J. K. Miettinen u. A. I. Virtanen, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 5476; A. I. Virtanen U. J.K.Miettinen, Nature 1952, 170 283: Zu 0,2% in den Wurzelknöllchen v. Alnus incana = Weisserle u. Spuren in denjenigen v. Alnus glutinosa = Schwarzerle.
P. R. Krishnaswamy u. K. V. Giri, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 10024: im Hydrolysat der roten Hefe = Rhodotorula glutinis var. rubescens.
J. C. Underwood u. L. B. Rockland, ref. Chem. Abstr. 1953, 47, 11352: im Saft v. Citrusfrüchten.
P. Linko, M. Alfthan, J. K. Miettinen u. A. I. Virtanen, ref. Chem. Abstr. 1954, 48 13824: aus der Flechte Cladonia silvatica isoliert.
J. F. Thompson, J. K. Pollard u. F. C. Steward, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 9743: 4 g aus 13 kg frischen Kartoffelknollen isoliert.
CH. Montant, ref. Chem. Abstr. 1956, 50 15746: in den Blättern v. Euphorbia characias beachtliche Mengen der freien Säure.
L. Fowden u. J. Done, Biochem. J. 1953, 55 548: kleine Mengen aus jungen Pflanzen der Erdnuss = Arachis hypogaea.
A. Husemann u. W. MarmÉ, A. 1863, Suppl. 2 383; 1864, Suppl. 3, 245: «Lycin¨ aus Blättern u. Stengeln v. Lycium barbarum L.; Bruttoformel.
O. Liebreich, B. 1869, 2 12, 167: durch Oxydation v. Neurin = Trimethyloxyäthylammonium erhalten; Name Oxyneurin.
C. Scheibler, B. 1869, 2 292: aus dem Saft der Zuckerrübe; Name Betain; Bruttoformel.
C. Scheibler, B. 1870, 3, 155; O. Liebreich, B. 1870, 3, 163: Oxyneurin u. Betain ident.
A. Husemann, Arch. Pharm. 1875, 206 216: Lycin mit Betain ident.
Nach B. T. Cromwell u. S.D. Rennie (Biochem. J. 1954, 58 318) resultiert die Betain-Synthese in den Geweben höherer Pflanzen zur Hauptsache aus der Oxydation von Cholin.
A. V. Planta, B. 1890, 23, 1699: aus Wurzelknollen v. Stachis tuberifera isoliert.
A. V. Planta u. E. Schulze, B. 1893, 26 939: Name; Bruttoformel; zur Konst.
E. Jahns, B. 1896, 29 2065: zu 0,1% aus getrockneten Blättern der bitteren Orange.
E. Schulze u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1909, 59 233: Konst.
E. Schulze u. G. Trier, B. 1909, 42, 4654: Synthese.
E. Schulze u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1910, 67 59: zu 0,045% aus frischen Stachysknollen u. zu 0,19% aus trockenen Orangenblättern.
E. Schulze u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1912, 76 258: in Blättern u. Stengeln v. Betonica officinalis L.
K. Yoshimura u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1912, 77, 290: als Chlorhydrat wurden-auf Trockengew. berechnet - erhalten: 0,08% aus Blüten v. Chrysanthemum cinerariae f olium 0,165% aus dem Kraut v. Galeopsis grandi f lora 0,01% aus Zitronenschalen u. 0,125% aus Orangenblättern.
H. Steenboce, J. Biol. Chem. 1918, 35, 1: 0,18% aus Alfalfa-Heu.
P. Karrer u. R. Widmer, Helv. 1925, 8 364: Konfiguration
H. B. Vickery, J. Biol. Chem. 1925, 65 81: 0,144% aus frischer Luzerne. Y.Hiwatari, ref. C. 1927, II, 268: 0,025% aus Früchten v. Citrus grandis Osb.
M. Sumi, Biochem. Z. 1928, 195 161: wenig aus Sporen v. Aspergillus oryzae.
H. Lim, ref. C. 1936, I, 365: sehr geringe Mengen aus dem Mycel des Pilzes Rhizopus japonicus.
A. J. Henry u. H. King, Soc. 1950, 2866: als Athylester in der Wurzel v. Courbonia virgata A. Brongn.
J.L. Van Eijk, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 6331: das von Haag aus Leonurus cardiaca isolierte Leonucardin ist Stachydrin.
J.W. Cornforth u. A. J. Henry, Soc. 1952, 601: aus Früchten v. Capparis tomentosa.
E. Schulze u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1912, 76 258: aus Blättern u. Stengeln v. Betonica officinalis L. u. Stachys silvatica L.; Name. Betonicin; Brutto- u. Konst.-Formel.
E. Schulze u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1912, 79 235: es gibt versch. «Betonicinbasen» mit versch. opt. Drehungen.
A. Kung u. G. Trier, Z. physiol. Ch. 1913, 85 209: das Betaingemisch aus Betonica oft. u. aus Stachys silvatica lässt sich in 2 Basen zerlegen: Betonicin u. Turicin; beides sind Betaine des natürl. Oxyprolins, bei dessen erschöpfender Methylierung das gleiche Gemisch erhalten wird.
A. König, Z. physiol. Ch. 1913, 85 217: Synthese beider Verbindungen aus natürl. Oxyprolin.
D. Ackermann u. W. Appel, Z. physiol. Ch. 1939, 262 103: Betonicin zu 0,017% aus den Samen v. Canavalia ensiformis = Jackbohne.
J. W. Cornforth u. A. J. Henry, Soc. 1952, 597: aus den Fruchthülsen v. Courbonia virgata wurden zu ca. 10% die rechtsdrehenden Formen von trans-u. cis-3-Oxystachydrin isoliert: ca. 9% 3-Oxystachydrin-a und 0,9% 3-Oxystachydrin-b; aus den Kernen wurden 0,5% des a-Isomeren erhalten.
M. Greshoff, B. 1890, 23 3537 resp. 3540: erstmalige Erwähnung der Isolierung aus Rinde u. Samen v. Erythrina (Hypaphorus) subumbrans; Name.
P. Van Romburgh, ref. C. 1911, I, 1548: Brutto- u. Konst.-Formel.
P. Van Romburgh u. G. Barger, Soc. 1911, 99 2068: Synthese.
J. Maranon u. J. K. Santos, ref. C. 1932, II, 2834: aus den Samen — spez. den Cotyledonen — v. Erythrina indica Lam.
P. Rao, C. V. Rao u. T. R. Seshadri, ref. Chem. Abstr. 1938,. 32, 5240: zu 1,2% aus den entfetteten Samen v. Erythrina indica geringe Mengen auch in Rinde u. Blättchen.
M. Cahill u. R. W. Jackson, J. Biol. Chem. 1938, 126 29: Konfiguration.
K. Folkers u. F.KoNiuszv, Am. Soc. 1940, 62 436: zu 0,16–3,5% aus den Samen von weiteren 5 Erythrina-Arten.
K. Folkers u. R. T. Major, ref. Chem. Abstr. 1945, 39 5408: zu 22,5% aus den Samen v. Erythrina americana.
F. Kutscher, Z. physiol. Ch. 1910, 24, 775: aus dem Champignon-Extrakt Hercynia » isoliert; Bruttoformel; als trimethyliertes Histidin gedeutet.
G. Barger U. A. J. Ewins, Soc. 1911, 99 2336; Biochem. J. 1913, 7, 204: Histidinbetain aus Ergothionein (aus Mutterkorn) dargestellt.
C. Reuter, Z. physiol. Ch. 1912, 78 167 resp. 201; E. Winterstein U. C. Reuter, Z. physiol. Ch. 1913, 86 234: aus dem Steinpilz = Boletus edulis isoliert.
R. Engeland u. F. Kutscher, ref. C. 1913, I, 28: Name Hercynin; Beweis der Konst. durch Synthese.
A. Kong, Z. physiol. Ch. 1914, 91 241: aus dem Fliegenpilz = Amanita muscaria isoliert.
CH. Tanret, ref. C. 1909, II, 1474: zu ca. 0,1% aus Mutterkorn v. Roggen; Name; Bruttoformel.
G. Barger U. A. J. Ewins, Soc. 1911, 99 2336: Konst.
G. Tanret, ref. C. 1922, Iii, 1229; Bull. 1922, [4] 31 444, ref. C. 1923, Iii, 564: zu ca. 0,05% aus dem Mutterkorn des Hafers u. der afrikan. Graminee Ampelodesma tenax.
E. B. Newton, ST. R. Benedict u. H. D. Dakin, Science 1926, 64 602, ref. C. 1927, I, 1312; J. Biol. Chem. 1927, 72, 367: das von ST. R. Benedict, E. B. Newton U. J. A. Behre 1926 aus Blut isolierte a Thiasin» ist mit Ergothionein ident.
B.A. Eagles u. T. B. Johnson, Am. Soc. 1927, 49 475: das von G. Hunter U. B. A. Eagles aus Blut isolierte «Sympectothion» (J. Biol. Chem. 1925, 65 623) ist mit Ergothionein ident.
G. Hunter, S. G. Fushtey u. D. W. Gee, ref. Chem. Abstr. 1949, 43, 9379: aus Mutterkorn versch. Wirtspflanzen zu 0,157–0,531%.
H. Heath, A. Lawson u. C. Rimington, Nature 1950, 166 106, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 2478: Synthese.
W. Gulewitsch u. R. Krimberg, Z. physiol. Ch. 1905, 45 326: aus Liebigs Fleischextrakt isoliert; Name Carnitin; Bruttoformel.
F. Kutscher, ref. C. 1905, II, 1549: aus Liebigs Fleischextrakt erhalten; Name Novain.
R. Krimberg, Z. physiol. Ch. 1906, 48 412; 1908, 55, 466: Novain mit Carnitin ident.
R. Krimberg, Z. physiol. Ch. 1907, 50 361; 1907, 53, 514: Konst.
M. Tomita, Z. physiol. Ch. 1923, 124 253: Synthese der Racemverb.
M. Tomita u. Y. Sendju, Z. physiol. Ch. 1927, 169 263: Beweis für Konst.
G. Fraenkel, M. Blewett u. M. Coles, Nature 1948, 161 981, ref. Chem. Abstr. 1948, 42 6436: Bezeichnung «Vit. BT» für eine in Leber u. Hefe vorkommende, für den Mehlwurm (= Tenebrio molitor) notwendige Substanz.
G. Fraenkel, Arch. Biochem. Biophys. 1951, 34, 457, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 5694: Vit. BT findet sich ausser im Muskelfleisch in der Hefe zu 1–2% des Trockengew. u. in Weizenkeimen, andere Pflanzen sind arm daran.
H. E. Carter, P. K. Bhattacharyya, K. R. Weidman u. G. Fraenkel, Arch. Biochem. Biophys. 1952, 35, 241, ref. Chem. Abstr. 1952, 46 5694: Vit. BT ist mit Carnitin ident.
E. J. Jahns, B. 1885, 18 2518: zu 0,13% aus Samen v. Trig.onella foenum-graecum = Bockshornsamen; Name Trigonellin; Bruttoformel; zur Konst.
A. Hantzsch, B. 1886, 19 31: synthet. Darst. des Methylbetains der Nicotinsäure; Konst.
E. Jahns, B. 1887, 20 2840: Trigonellin mit dem Methylbetain der Nicotinsäure ident.
P. Palladino, ref. B. 1894, 27 Ref. 406: «Coffearin» aus der rohen Kaffeebohne. K. Gorter, A. 1910, 372, 237: Coffearin mit Trigonellin ident.
F. G. Hopkins, Biochem. J. 1921, 15 286: erstmals - wenn auch nicht ganz rein aus Hefe isoliert.
F. G. Hopkins u. M. Dixon, J. Biol. Chem.1922, 54, 527: Name.
F.G.Hopkins, J. Biol. Chem. 1929, 84 269: zu 0,1–0,12% aus Hefe; Bruttoformel; ist ein Tripeptid aus Glutaminsäure -F Cystein -F Glykokoll.
W. Grassmann, H. Dyckerhoff u. H. Eibeler, Z. physiol. Ch. 1930, 189 112; Ben H. Nicolet, Science 1930, 71 589, ref. C. 1930, II, 747: Konstitution.
CH. R. Harington u. TH. H. Mead, Biochem. J. 1935, 29 1602: Synthese.
V. B. White, Science 1930, 71 74, ref. C 1930, I, 2109: kommt im ganzen Pflanzenreich von z. B. Aspergillus niger bis Prunus persica vor, anscheinend mit Ausnahme der Algen.
L. B. Pett, Biochem. J. 1936, 30 1228: beim Keimen der Kartoffel tritt eine starke Zunahme des Glutathion-Gehaltes ein.
B. Sullivan u. M. Howe, Am. Soc. 1937, 59 2742: zu 0,05–0,1% aus frischen Weizenkeimlingen.
T. E. Miller u. R. W. Stone, ref. Chem. Abstr. 1938, 32, 9168: in zahlreichen Mikroorganismen.
F. G. Hopkins u. E. J. Morgan, Nature 1943, 152 288, ref. Chem. Abstr. 1944, 38 146: aus Erbsen isoliert.
W. A. Reeves u. J. D. Guthrie, Arch. Biochem. 1950, 26 316, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 7466: 43 mg aus 9 kg Erdnuss-Kernen isoliert.
G. Petrosini u. T. Eschena, ref. Chem. Abstr. 1950, 44, 9517: 3 resp. 12 mg aus 100 g unreifen resp. reifen Tomaten.
K. Katai, ref. Chem. Abstr. 1951, 45, 2544: 0,14–0,4% aus Maulbeerblättern.
J. Krimsky u. E. Racker, J. Biol. Chem. 1952, 198 375: Glutathion ist die prosthetische Gruppe der Glycerinaldehyd-3-phosphat-dehydrogenase.
J. K. Miettinen, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 8405: ansehnliche Mengen in jungen Pflanzen der Erbse nachgewiesen.
PL. A. Plattner u. N. Clauson-Kaas, Helv. 1945, 28 188: Isolierung aus Kulturfiltraten von Fusarium lycopersici Sacc.,’die die Welkekrankheit bei Pflanzen, bes. bei Tomaten, erzeugen können; Bruttoformel; die Substanz zeigt starke Welkwirkung.
PL. A. Plattner u. N. Clauson-Kaas, Exper. 1945, 1, 195, ref. Che 1946, 40 4771: Name; zur Konst.
D. W. Woolley, J. Biol. Chem. 1946, 166 783: zur Konst.
PL. A. Plattner, N. Clauson-Kaas, A. Boller u. U. Nager, Helv. 860: zur Konst.
D. W. Woolley, J. Biol. Chem. 1948, 176 1291: zur Konst.
PL. A. Plattner, H. H. GÜNthard u. A. Boller, Helv. 1952, 35 999 gung der Bruttoformel.
F. Lynen u. U. Wieland, A. 1938, 533 93: krist. Giftstoff aus dem Knollenblätterpilz = Amanita phalloides; Name.
H. Wieland u. B. Witxop, A. 1940, 543, 171: bei der Hydrolyse wurden 4 Aminosäuren erhalten.
TH. Wieland u. G. Schmidt, A. 1952, 577, 215 resp. 218: als 5. Aminosäure wurde bei der Spaltung Threonin erhalten.
TH. Wieland u. W. SchÖN, A. 1955,. 593 157: aus 650 kg frischem Knollenblätterpilz 27 g Phalloidin erhalten; als letzter u. neuer Baustein wurde S-Oxyleucenin gefunden; Brutto- u. Konst.-Formel.
SH. Otani u. Y. Saito, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 13362: aus einem Stamm v. Bacillus brevis isoliert; Name; ist ein cyclisches Heptapeptid obiger Anordnung; wirkt antibiotisch.
G. F. Gause u. M. G. Brazhnikova, ref. Chem. Abstr. 1945, 39 1893; Nature 1944, 154 703: aus einem Stamm v. Bacillus brevis isoliert; Name; ist ein Polypeptid; wirkt antibiotisch.
R.L.M. Synge, Biochem. J. 1945, 39 363: bei der Hydrolyse wurden die 5 versch. Aminosäuren erhalten.
R. Consden, A. H. Gordon, A. J. P. Martin u. R. L. M. Synge, J. Biol. Chem. 1947, 41 596; B. F. Erlanger u. L. Goode, Nature 1954, 174 840, ref. Chem. Abstr. 1955, 49 7194: Konstitution: ein cyclisches Decapeptid in obiger Anordnung der Aminosäuren.
R. Schwyzer u. P. Sieber, Angew. Chem. 1956, 518: Konst.-Beweis durch Synthese.
A. R. Battersby u. L. C. Craig, Am. Soc. 1952, 74, 4019: als eine Komponente aus dem Antibioticum Tyrocidin (aus Kulturen v. Bacillus brevis) isoliert; Bezeichnung; ist ein cyclisches Peptid, bestehend aus 10 Aminosäuren (L-Leucin, L-Valin, L-Tyrosin, L-Prolin, L-Ornithin, L-Glutaminsäure, L-Asparaginsäure, L-Phenylalanin u. 2 Mol D-Phenylalanin).
A. Paladini u. L. C. Craig, Am. Soc. 1954, 76 688: Anordnung der Aminosäuren.
T. P. King u. L. C. Craig, Am. Soc. 1955, 77, 6624, 6627: Tyrocidin B das ebenfalls aus Kulturen v. Bacillus brevis erhalten wurde, besteht aus den gleichen 10 Aminosäuren wie Tyrocidin A, mit Ausnahme von L-Phenylalanin, das durch L-Tryptophan ersetzt ist; die cycl. Anordnung u. vermutlich auch Reihenfolge der Aminosäuren ist bei Tyrocidin A u. B dieselbe.
P. G. Stansly u. M. E. Schlosser, ref. Chem. Abstr. 1948, 42 948: Isolierung aus Kulturfiltraten v. Bacillus polymyxa; Name Polymyxin.
R. G. Shepherd, P. G. Stansly, R. Winterbottom, J. P. English, C. E. Fellows, N. H. Ananenko u. G. L. Guillet, Am. Soc. 1948, 70 3771: Polymyxin ist ein Polypeptid.
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Karrer, W. (1976). Aminosäuren, Betaine, Peptide. In: Konstitution und Vorkommen der organischen Pflanzenstoffe (exclusive Alkaloide). Chemische Reihe, vol 12. Birkhäuser, Basel. https://doi.org/10.1007/978-3-0348-5142-8_29
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