ПОЛИМОРФИЗМ ПРОМОТОРНОЙ ОБЛАСТИ ГЕНА TASAP-А1 В КОЛЛЕКЦИИ СОРТОВ И ЛИНИЙ ОЗИМОЙ ПШЕНИЦЫ (TRITICUM AESTIVUM L.) И ЕГО ВЛИЯНИЕ НА АГРОНОМИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ

В ходе исследования промоторной области гена TaSAP-А1 по аллельному составу Sap5, Sap39 и Sap2606 локусов установлено, что сорта и линии озимой пшеницы из коллекции, используемой в селекционном процессе в Республике Беларусь в 2014 г., относятся к 4 гаплотипам, при этом большинство протестированных образцов (45,6 %) принадлежит к гаплотипу II. Выявлено, что гаплотип IV способствует повышению массы тысячи зерен и урожайности на 5,2 и 9,2 %, а гаплотип I – увеличению длины главного колоса и числа колосков в главном колосе на 4,4 и 2,2 % соответственно по сравнению со средними значениями данных показателей. Также установлено, что наличие делеции в позиции –1810 п. н. оказывает положительное влияние на длину главного колоса, число колосков в главном колосе и урожайность, наличие инсерции в позиции –1637 п. н. – на длину главного колоса, а наличие делеции в данной позиции – на урожайность. Выявлено положительное влияние SNP-2606С в позиции –2606 п. н. на массу тысячи зерен, длину главного колоса и урожайность.

1. HapIII of TaSAP1-A1, a positively selected haplotype in wheat breeding / J. Chang [et al.] // J. of Integrative Agriculture. – 2014. – Vol. 13, N 7. – P. 1462–1468. https://doi.org/10.1016/s2095-3119(14)60808-x

2. Mukhopadhyay, A. Overexpression of a zincfinger protein gene from rice confers tolerance to cold, dehydration, and salt stress in transgenic tobacco / A. Mukhopadhyay, S. Vij, A. K. Tyagi // Proc. of the Natl. Academy of Sciences of the USA. – 2004. – Vol. 101, N 16. – P. 6309–6314. https://doi.org/10.1073/pnas.0401572101

3. Polymorphism of TaSAP1-A1 and its association with agronomic traits in wheat / J. Chang [et al.] // Planta. – 2013. – Vol. 237, N 6. – P. 1495–1508. https://doi.org/10.1007/s00425-013-1860-x

4. Linnen, J. M. Two related localized mRNAs from Xenopus laevis encode ubiquitinlike fusion proteins / J. M. Linnen, C. P. Bailey, D. L. Weeks // Gene. – 1993. – Vol. 128, N 2. – P. 181–188. https://doi.org/10.1016/0378-1119(93)90561-g

5. Agarwal, S. Stimulation of antioxidant system and lipid peroxidation by abiotic stresses in leaves of Momordica charantia / S. Agarwal, R. Shaheen // Brazilian J. of Plant Physiology. – 2007. – Vol. 19, N 2. – P. 149–161. https://doi.org/10.1590/ s1677-04202007000200007

6. Ciftci-Yilmaz, S. The zinc finger network of plants / S. Ciftci-Yilmaz, R. Mittler // Cellular and Molecular Life Sciences. – 2008. – Vol. 65, N 7–8. – P. 1150–1160. https://doi.org/10.1007/s00018-007-7473-4

7. Vij, S. A20/AN1 zinc-finger domain-containing proteins in plants and animals represent common elements in stress response / S. Vij, A. K. Tyagi // Funct. Integr. Genomics. – 2008. – Vol. 8, N 3. – P. 301–307. https://doi.org/10.1007/s10142- 008-0078-7

8. Improved drought and salt stress tolerance in transgenic tobacco overexpressing a novel A20/AN1 zinc-finger “AlSAP” gene isolated from the halophyte grass Aeluropus littoralis / R. Ben Saad [et al.] // Plant Molecular Biology. – 2009. – Vol. 72, N 1–2. – P. 171–190. https://doi.org/10.1007/s11103-009-9560-4

9. A stress-associated protein containing A20/AN1 zing-finger domains expressed in Medicago truncatula seeds / C. Gimeno-Gilles [et al.] // Plant Physiol. Biochem. – 2011. – Vol. 49, N 3. – P. 303–3

10. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2011.01.004 10. OsDOG, a gibberellin-induced A20/AN1 zincfinger protein, negatively regulates gibberellin-mediated cell elongation in rice / Y. J. Liu [et al.] // J. of Plant Physiology. – 2011. – Vol. 168, N 10. – P. 1098–1105. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2010.12.013

11. Wang, C. X. Isolation and functional analysis of stress-response gene TaABC1 and TaSAP1/2 from wheat (Triticum aestivum L.) : Abstract of Ph. D. diss. / C. X. Wang. – China, 2011.

12. Plaschke, J. Detection of genetic diversity in closely related bread wheat using microsatellite markers / J. Plaschke, M. W. Ganal, M. S. Röder // Theoretical and Appl. Genetics. – 1995. – Vol. 91, N 6–7. – P. 1001–1007. https://doi.org/10.1007/ bf00223912

13. Mapping quantitative trait loci for post-anthesis dry matter accumulation in wheat / J.-Y. Su [et al.] // J. of Integrative Plant Biology. – 2006. – Vol. 48, N 8. – P. 938–944. https://doi.org/10.1111/j.1744-7909.2006.00252.x

14. Advanced backcross QTL analysis for the identification of quantitative trait loci alleles from wild relatives of wheat (Triticum aestivum L.) / X. Q. Huang [et al.] // Theoretical and Appl. Genetics. – 2003. – Vol. 106, N 8. – P. 1379–1389. https:// doi.org/10.1007/s00122-002-1179-7

15. A high-density genetic map of hexaploid wheat (Triticum aestivum L.) from the cross Chinese Spring × SQ1 and its uses to compare QTLs for grain yield across a range of environments / S. A. Quarrie [et al.] // Theoretical and Appl. Genetics. – 2005. – Vol. 110, N 5. – P. 865–880. https://doi.org/10.1007/s00122-004-1902-7

16. QTL analysis of kernel shape and weight using recombinant inbred linesin wheat / X. Y. Sun [et al.] // Euphytica. – 2009. – Vol. 165, N 3. – Art. 615. https://doi.org/10.1007/s10681-008-9794-2